專利名稱：測定植物組培苗光合能力的方法
技術(shù)領(lǐng)域：
本發(fā)明涉及一種測定植物組培苗光合能力的方法，屬于生物工程領(lǐng)域。
背景技術(shù)：
植物組織培養(yǎng)是指植物的離體器官、組織或細胞在人工控制的環(huán)境下培養(yǎng)發(fā)育再 生成完整植株的技術(shù)。在植物組織培養(yǎng)過程中，組培苗的光合能力的大小影響植株的生長、 發(fā)育和分化。無菌在線測定組培苗的光合能力對工廠化的苗木生產(chǎn)，具有重要的意義，是調(diào) 控組培的環(huán)境因子、改良培養(yǎng)基的配方的重要依據(jù)。目前組培苗的光合能力的測定是基于容器內(nèi)的二氧化碳濃度的變化(徐志剛，崔 瑾，焦學磊，丁為民，李式軍，農(nóng)業(yè)工程學報，2003，第19卷第4期，pp. 38-40;王立文， 丁為民，丁永前，農(nóng)業(yè)機械學報，2005，第36卷第5期，pp. 93-96)，這種方法受測定環(huán)境的影 響較大，步驟相對復雜，并且不能測出組培苗固有的光合能力，測定時間較長。為了克服以 上問題，必須尋找快速、便捷的方法測定組培苗的光合能力。葉綠素熒光信號包含了非常豐富的植物光合作用信息，尤其是調(diào)制葉綠素熒光 技術(shù)的發(fā)明極大地推動了光合作用的快速、無損傷測量方法的發(fā)展，目前葉綠素熒光技術(shù) 已用廣泛地用來測定農(nóng)林園藝作物等的光合能力的測定。但是，由于組培苗是培養(yǎng)在容器中，調(diào)制熒光儀的探頭難以在無菌狀態(tài)下接近，不 能夾持組培苗的葉片，因此，限制了用葉綠素熒光技術(shù)測定組培苗的光合能力。雖然，調(diào)制熒光儀的探頭難以夾持組培苗的葉片，但是可以夾持組培瓶，使組培苗 的葉片暴露在探頭可探測的范圍內(nèi)。由于組培容器對光具有通透性，因此可以利用帶成像 功能的調(diào)制熒光成像系統(tǒng)的調(diào)制熒光儀的探頭獲取熒光圖像和熒光信號。利用組培容器對 光的通透性以及根據(jù)組培容器的透光率，換算各種熒光參數(shù)。換算后的熒光參數(shù)可以表征 組培苗的光合能力。1983年，WALZ公司首席科學家、德國烏茲堡大學教授Ulrich Schreiber 博士利用調(diào)制技術(shù)和飽和脈沖技術(shù)，設(shè)計制造了全世界第一臺脈沖振幅調(diào)制
(Pulse-Amplitude-Modulation,PAM)熒光儀-PAM-101/102/103 (調(diào)制葉綠素熒光儀的
工作原理，參見 http://baike. baidu. com/view/1116027. htm#l)。所謂調(diào)制技術(shù)，就是說用于激發(fā)熒光的測量光具有一定的調(diào)制(開/關(guān))頻率，檢測 器只記錄與測量光同頻的熒光，因此調(diào)制熒光儀允許測量所有生理狀態(tài)下的熒光，包括背 景光很強時。正是由于調(diào)制技術(shù)的出現(xiàn)，才使得葉綠素熒光由傳統(tǒng)的“黑匣子”(避免環(huán)境 光)測量走向了野外環(huán)境光下測量，由生理學走向了生態(tài)學。所謂飽和脈沖技術(shù)，就是打開一個持續(xù)時間很短(一般小于1 S)的強 光關(guān)閉所有的電子門(光合作用被暫時抑制)，從而使葉綠素熒光達到最大。飽和 脈沖(Saturation Pulse, SP)可被看作是光化光的一個特例。光化光越強，PS
II釋放的電子越多，PQ處累積的電子越多，也就是說關(guān)閉態(tài)的電子門越多，F(xiàn)越高。當光化 光達到使所有的電子門都關(guān)閉(不能進行光合作用)的強度時，就稱之為飽和脈沖。
打開飽和脈沖時，本來處于開放態(tài)的電子門將該用于光合作用的能量轉(zhuǎn)化為了葉 綠素熒光和熱，F(xiàn)達到最大值。經(jīng)過充分暗適應(yīng)后，所有電子門均處于開放態(tài)，打開測量光得到Fo，此時給出一 個飽和脈沖，所有的電子門就都將該用于光合作用的能量轉(zhuǎn)化為了熒光和熱，此時得到 的葉綠素熒光為Fm。根據(jù)Fm和Fo可以計算出光系統(tǒng)II (PS II)的最大量子產(chǎn)量Fv/ Fm= (Fm-Fo) /Fm，它反映了植物的潛在最大光合能力。在光照下光合作用進行時，只有部分電子門處于開放態(tài)。如果給出一個飽和脈沖， 本來處于開放態(tài)的電子門將該用于光合作用的能量轉(zhuǎn)化為了葉綠素熒光和熱，此時得到 的葉綠素熒光為Fm’。根據(jù)Fm’和F可以求出在當前的光照狀態(tài)下PS II的實際量子產(chǎn)量 Yield=OPSII =AF/Fm' =(Fm，-F)/Fm，，它反映了植物目前的實際光合效率。在光照下光合作用進行時，只有部分電子門處于關(guān)閉態(tài)，實時熒光F比Fm要低，也 就是說發(fā)生了熒光淬滅(quenching)。植物吸收的光能只有3條去路光合作用、葉綠素熒 光和熱。根據(jù)能量守恒1 =光合作用+葉綠素熒光+熱?？梢缘贸鋈~綠素熒光=ι -光合作用一熱。也就是說，葉綠素熒光產(chǎn)量的下降(淬滅)有可能是由光合作用的增加或 熱耗散的增加引起的。由光合作用的引起的熒光淬滅稱之為光化學淬滅(photochemical quenching, qP)；由熱耗散引起的熒光淬滅稱之為非光化學淬滅(non-photochemical quenching, qN或NPQ)。光化學淬滅反映了植物光合活性的高低；非光化學淬滅反映了植 物耗散過剩光能為熱的能力，也就是光保護能力。光照狀態(tài)下打開飽和脈沖時，電子門被完全關(guān)閉，光合作用被暫時抑制，也就是說 光化學淬滅被全部抑制，但此時熒光值還是比Fm低，也就是說還存在熒光淬滅，這些剩余 的熒光淬滅即為非光化學淬滅。淬滅系數(shù)的計算公式為qP=(Fm’ -Fs)/Fv' =1-(Fs-Fo' )/ (Fm，-Fo，) ；qN= (Fv-Fv' )/Fv=I-(Fm，—Fo，)/(Fm-Fo) ；NPQ= (Fm-Fm' )/Fm，=Fm/Fm，-1。根據(jù)PSII的實際量子產(chǎn)量ΔF/Fm，和光合有效輻射(Photosynthetically Active Radiation, PAR)還可計算出光合電子傳遞的相對速率rETR=AF/Fm，？ PAR 0. 84 0. 5。 其中0. 84是植物的經(jīng)驗性吸光系數(shù)，0. 5是假設(shè)植物吸收的光能被兩個光系統(tǒng)均分。本發(fā)明就是利用以上調(diào)制熒光成像系統(tǒng)原理獲取組培苗的光合能力信息。

發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明要解決的技術(shù)問題是，提供一種測定植物組培苗光合能力的方法，該方法 在不夾持組培苗葉片的情況下，獲取組培苗葉片的熒光參數(shù)，在線、無菌獲取組培苗的光合 能力信息，以克服現(xiàn)有技術(shù)存在的受測定環(huán)境的影響較大，步驟相對復雜，不能測出組培苗 固有的光合能力，測定時間較長等不足。本發(fā)明采取以下技術(shù)方案它包含以下步驟第一，將含有組培苗的組培瓶，經(jīng)過 暗適應(yīng)后，使組培苗的葉片暴露在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)的探頭探測的范圍內(nèi)；第二，獲取葉綠 素熒光圖像，從熒光圖像上選點記錄組培苗葉片的基礎(chǔ)葉綠素熒光信息；第三，測定該組培 苗葉片的表觀熒光動力學參數(shù)，獲取葉綠素熒光參數(shù)值；第四，測定同質(zhì)組培瓶相同位置對 熒光的透過率；第五、根據(jù)測定的組培瓶對熒光的透過率，將通過組培瓶觀察的表觀葉綠素 熒光參數(shù)換算成無組培瓶阻擋熒光通過的組培苗實際葉綠素熒光參數(shù)，這些參數(shù)即表征該組培苗的光合能力。在第一步驟中，是將含有組培苗的組培瓶放在暗處，使組培苗暗適應(yīng)后，整瓶放在 調(diào)制熒光成像系統(tǒng)的持物臺上，調(diào)整組培瓶的方向和位置使組培苗的葉片暴露在調(diào)制熒光 成像系統(tǒng)的探頭探測的范圍內(nèi)。在第二步驟中，獲取PS II的最大量子產(chǎn)量Fv/Fm的熒光圖像，從熒光圖像中選點 記錄組培苗葉片表觀基礎(chǔ)熒光Fo、表觀最大熒光Fm以及PS II的最大量子產(chǎn)量Fv/Fm的信 肩、ο在第三步驟中，測定在光化光的照射下該組培苗葉片的表觀熒光動力學參數(shù)，獲 取其PS II的實際量子產(chǎn)量ΦΡ、ΙΙ光化學淬滅系數(shù)qP、非光化學淬滅系數(shù)qN和光合電子 傳遞的相對速率rETR值。本發(fā)明的原理是依據(jù)調(diào)制葉綠素熒光儀的工作原理、熒光成像原理以及組培容 器具有透光性，用調(diào)制熒光成像系統(tǒng)獲取組培苗葉片熒光圖像和組培苗葉片的表觀葉綠素 熒光參數(shù)，依據(jù)組培容器的透光率換算成組培苗葉片的實際葉綠素熒光參數(shù)，組培苗實際 葉綠素熒光參數(shù)代表著組培苗的光合能力。本發(fā)明的優(yōu)點如下
1)本方法能簡便、可靠地測定植物組培苗的光合能力。2)本方法能在線、無菌、快速測定組培苗光合能力。
具體實施例方式
具體實施例方式它包含以下步驟
第一，將含有組培苗的組培瓶，放在不透光的黑色布袋中暗處理20-30 min，使組培苗 暗適應(yīng)后，整瓶放在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)的持物臺上，調(diào)整組培瓶的方向和位置使組培苗的 葉片暴露在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)的探頭可探測的范圍內(nèi)。第二，按常規(guī)步驟，獲取PSII的最大量子產(chǎn)量Fv/Fm的熒光圖像在熒光圖像上選 取合適的點記錄組培苗葉片表觀基礎(chǔ)熒光Fo、表觀最大熒光Fm以及PSII的最大量子產(chǎn)量 Fv/Fm的信息。第三，按常規(guī)步驟，測定該組培苗葉片的表觀熒光動力學參數(shù)，獲取PSII的實際量 子產(chǎn)量ΦΡ、Π光化學淬滅系數(shù)qP、非光化學淬滅系數(shù)qN和光合電子傳遞的相對速率rETR值。第四，選擇與含有待測組培苗同質(zhì)的組培瓶，破壞性獲取它的相同位置對熒光的 透過率，記為T。第五，根據(jù)上述測定的組培瓶對熒光的透過率，將通過組培瓶觀察的表觀葉綠素 熒光參數(shù)換算成無組培瓶阻擋熒光通過的組培苗實際葉綠素熒光參數(shù)。其換算方法為
實際基礎(chǔ)熒光(記為RFo) =表觀基礎(chǔ)熒光(記為AFo)/T、實際最大熒光(記為RFm) =表 觀最大熒光(記為AFm)/T。其他參數(shù)因是熒光的比值，所以不需換算。也就是說表觀Fv/ Fm=實際Fv/Fm、表觀Φ PS II =實際Φ PS II、表觀qP=實際qP、表觀qN=實際qN、表觀 rETR=實際rETR。因此，可以不改變符號來表征它們的意義。這些參數(shù)綜合表征該組培苗的光合能力。應(yīng)用實施例1 測定低溫處理后諸葛菜組培苗的光合能力。試驗在人工氣候室內(nèi) 進行，室內(nèi)溫度、濕度及CO2濃度均可調(diào)。培養(yǎng)室溫度為25士0. 5°C, CO2濃度控制在360 ymol-moF1,空氣濕度控制為45%。供試材料為培養(yǎng);Γ4代的繼代諸葛菜組培苗。組培瓶 由玻璃制作的150 ml三角培養(yǎng)瓶。光周期為光14 h，暗10 h，培養(yǎng)基為含3%蔗糖的MS附 加0. 1 mg · L—1 NAA ( α —奈乙酸)、2 mg · L—1 6-BA (6-芐基嘌呤)的培養(yǎng)基，培養(yǎng)基用量 為50 ml。光強設(shè)定為100 μ mol · m_2 · s—1，培養(yǎng)15天后。對照組培苗繼續(xù)培養(yǎng)3天；處 理1 組培苗在0士0. 5°C下黑暗處理3天；處理2 組培苗在4士0. 5°C下黑暗處理3天；處 理3 組培苗在8士0. 5°C下黑暗處理3天。隨后用本發(fā)明測定低溫處理后諸葛菜組培苗的 光合能力。將上述含有諸葛菜組培苗的組培瓶，放在不透光的黑色布袋中暗處理30 min，使 組培苗暗適應(yīng)后，整瓶放在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)IMAGING-PAM的持物臺上，調(diào)整組培瓶的方 向和位置使組培苗的葉片暴露在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)IMAGING-PAM的探頭可探測的范圍內(nèi)。 按常規(guī)步驟，獲取PS II的最大量子產(chǎn)量Fv/Fm的熒光圖像在熒光圖像上選取合適的點記 錄組培苗葉片表觀基礎(chǔ)熒光Fo、表觀最大熒光Fm以及PS Ii的最大量子產(chǎn)量Fv/Fm的信息。 隨后，按常規(guī)步驟，在100 μ mol ^nThs-1光化光的照射下，測定該組培苗葉片的表觀熒 光動力學參數(shù)，獲取其PS II的實際量子產(chǎn)量OPSII、光化學淬滅系數(shù)qP、非光化學淬滅系 數(shù)qN和光合電子傳遞的相對速率rETR值。選擇與含有待測組培苗同質(zhì)地的組培瓶，破壞 性獲取它的相同位置對熒光的透過率，記為T。根據(jù)上述測定的組培瓶對熒光的透過率，將 通過組培瓶觀察的表觀葉綠素熒光參數(shù)換算成無組培瓶阻擋熒光通過的組培苗實際葉綠 素熒光參數(shù)。換算方法為
實際基礎(chǔ)熒光(記為RFo) =表觀基礎(chǔ)熒光(記為AFo)/T、實際最大熒光(記為RFm) =表 觀最大熒光(記為AFm)/T。其他參數(shù)因是熒光的比值，所以不需換算。也就是說表觀Fv/ Fm=實際Fv/Fm、表觀OPSII =實際ΦPSII、表觀qP=實際qP、表觀qN=實際qN、表觀rETR= 實際rETR。因此，可以不改變符號來表征它們的意義。這些參數(shù)綜合表征該組培苗的光合 能力。應(yīng)用實施例2 測定LED紅光處理后諸葛菜組培苗的光合能力。試驗在人工氣候室 內(nèi)進行，室內(nèi)溫度、濕度及CO2濃度均可調(diào)。培養(yǎng)室溫度為25士0. 5°C，CO2濃度控制在360 μ mol ·moΓ1,空氣濕度控制為45%。供試材料為培養(yǎng);Γ4代的繼代諸葛菜組培苗。組培瓶 由玻璃制作的150 ml三角培養(yǎng)瓶。光周期為光14 h，暗10 h，培養(yǎng)基為含3%蔗糖的MS附 加0. 1 mg -Γ1 NAA (α 一奈乙酸)、2 mg -Γ1 6-BA (6-芐基嘌呤)的培養(yǎng)基，培養(yǎng)基用量為 50 ml。光強設(shè)定為100 μ mol ·πΓ2 -s"1,培養(yǎng)15天后。對照組培苗繼續(xù)培養(yǎng)3天；處理4 組培苗在50 μ mol ·πΓ2 · S4LED紅光下處理3天；處理5 組培苗在100 μ mol ·πΓ2 · S4LED 紅光下處理3天。隨后用本發(fā)明測定LED紅光處理后諸葛菜組培苗的光合能力。將上述含有諸葛菜組培苗的組培瓶，放在不透光的黑色布袋中暗處理30 min，使 組培苗暗適應(yīng)后，整瓶放在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)IMAGING-PAM的持物臺上，調(diào)整組培瓶的方 向和位置使組培苗的葉片暴露在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)IMAGING-PAM的探頭可探測的范圍內(nèi)。 按常規(guī)步驟，獲取PS II的最大量子產(chǎn)量Fv/Fm的熒光圖像，在熒光圖像上選取合適的點記錄組培苗葉片表觀基礎(chǔ)熒光Fo、表觀最大熒光Fm以及PSII的最大量子產(chǎn)量Fv/Fm的信息。 隨后，按常規(guī)步驟，在100 μ mol ^nThs-1光化光的照射下，測定該組培苗葉片的表觀熒 光動力學參數(shù)，獲取其PS II的實際量子產(chǎn)量OPSII、光化學淬滅系數(shù)qP、非光化學淬滅系 數(shù)qN和光合電子傳遞的相對速率rETR值。選擇與含有待測組培苗同質(zhì)地的組培瓶，破壞 性獲取它的相同位置對熒光的透過率，記為T。根據(jù)上述測定的組培瓶對熒光的透過率，將 通過組培瓶觀察的表觀葉綠素熒光參數(shù)換算成無組培瓶阻擋熒光通過的組培苗實際葉綠 素熒光參數(shù)。換算方法為
實際基礎(chǔ)熒光(記為RFo) =表觀基礎(chǔ)熒光(記為AFo)/T、實際最大熒光(記為RFm) =表 觀最大熒光(記為AFm)/T。其他參數(shù)因是熒光的比值，所以不需換算。也就是說表觀Fv/ Fm=實際Fv/Fm、表觀ΦPSII =實際ΦPSII表觀qP=實際qP、表觀qN=實際qN、表觀rETR= 實際rETR。因此，可以不改變符號來表征它們的意義。這些參數(shù)綜合表征該組培苗的光合 能力。應(yīng)用實施例3 測定LED藍光處理后諸葛菜組培苗的光合能力。試驗在人工氣候室 內(nèi)進行，室內(nèi)溫度、濕度及CO2濃度均可調(diào)。培養(yǎng)室溫度為25 士 0. 5°C，CO2濃度控制在360 ymol-moF1,空氣濕度控制為45%。供試材料為培養(yǎng);Γ4代的繼代諸葛菜組培苗。組培瓶 由玻璃制作的150 ml三角培養(yǎng)瓶。光周期為光14 h，暗10 h，培養(yǎng)基為含3%蔗糖的MS附 加0. Img · L—1 NAA ( α —奈乙酸)、2 mg · L—1 6-BA (6-芐基嘌呤)的培養(yǎng)基，培養(yǎng)基用量為 50 ml。光強設(shè)定為100 μ mol ·πΓ2 -s"1,培養(yǎng)15天后。對照組培苗繼續(xù)培養(yǎng)3天；處理6 組培苗在50 μ mol ·πΓ2 · S-1LED藍光下處理3天；處理7 組培苗在100 μ mol ·πΓ2 · S4LED 藍光下處理3天。隨后用本發(fā)明測定LED藍光處理后諸葛菜組培苗的光合能力。將上述含有諸葛菜組培苗的組培瓶，放在不透光的黑色布袋中暗處理30 min，使 組培苗暗適應(yīng)后，整瓶放在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)IMAGING-PAM的持物臺上，調(diào)整組培瓶的方 向和位置使組培苗的葉片暴露在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)IMAGING-PAM的探頭可探測的范圍內(nèi)。 按常規(guī)步驟，獲取PS II的最大量子產(chǎn)量Fv/Fm的熒光圖像，在熒光圖像上選取合適的點記 錄組培苗葉片表觀基礎(chǔ)熒光Fo、表觀最大熒光Fm以及PS II的最大量子產(chǎn)量Fv/Fm的信 息。隨后，按常規(guī)步驟，在100 μ mol ^nThs-1光化光的照射下，測定該組培苗葉片的表 觀熒光動力學參數(shù)，獲取其PS II的實際量子產(chǎn)量OPSII、光化學淬滅系數(shù)qP、非光化學淬 滅系數(shù)qN和光合電子傳遞的相對速率rETR值。選擇與含有待測組培苗同質(zhì)地的組培瓶， 破壞性獲取它的相同位置對熒光的透過率，記為T。根據(jù)上述測定的組培瓶對熒光的透過 率，將通過組培瓶觀察的表觀葉綠素熒光參數(shù)換算成無組培瓶阻擋熒光通過的組培苗實際 葉綠素熒光參數(shù)。換算方法為
實際基礎(chǔ)熒光(記為RFo) =表觀基礎(chǔ)熒光(記為AFo)/T、實際最大熒光(記為RFm) =表 觀最大熒光(記為AFm)/T。其他參數(shù)因是熒光的比值，所以不需換算。也就是說表觀Fv/ Fm=實際Fv/Fm、表觀OPSII =實際ΦPSII、表觀qP=實際qP、表觀qN=實際qN、表觀rETR= 實際rETR。因此，可以不改變符號來表征它們的意義。這些參數(shù)綜合表征該組培苗的光合 能力。以上3個應(yīng)用實施例的效果表1表示的是不同處理下諸葛菜組培苗的光合能力。 括號中的數(shù)值表示的標準誤差。
表1不同處理下諸葛菜組培苗的光合能力
權(quán)利要求
一種測定植物組培苗光合能力的方法，其特征在于它包含以下步驟第一，將含有組培苗的組培瓶，經(jīng)過暗適應(yīng)后，使組培苗的葉片暴露在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)的探頭探測的范圍內(nèi)；第二，獲取葉綠素熒光圖像，從熒光圖像上選點記錄組培苗葉片的基礎(chǔ)葉綠素熒光信息；第三，測定該組培苗葉片的表觀熒光動力學參數(shù)，獲取葉綠素熒光參數(shù)值；第四，測定同質(zhì)組培瓶相同位置對熒光的透過率；第五、根據(jù)測定的組培瓶對熒光的透過率，將通過組培瓶觀察的表觀葉綠素熒光參數(shù)換算成無組培瓶阻擋熒光通過的組培苗實際葉綠素熒光參數(shù)，這些參數(shù)即表征該組培苗的光合能力。
2.根據(jù)權(quán)利要求1所述的測定植物組培苗光合能力的方法，其特征在于在第一步驟 中，是將含有組培苗的組培瓶放在暗處，使組培苗暗適應(yīng)后，整瓶放在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)的 持物臺上，調(diào)整組培瓶的方向和位置使組培苗的葉片暴露在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)的探頭探測 的范圍內(nèi)。
3.根據(jù)權(quán)利要求1所述的測定植物組培苗光合能力的方法，其特征在于在第二步驟 中，獲取PSII的最大量子產(chǎn)量Fv/ Fm的熒光圖像，從熒光圖像中選點記錄組培苗葉片表觀基礎(chǔ)熒光Fo、表觀最大熒光Fm以及 PS II的最大量子產(chǎn)量Fv/Fm的信息。
4.根據(jù)權(quán)利要求1所述的測定植物組培苗光合能力的方法，其特征在于在第三步驟 中，測定在光化光的照射下該組培苗葉片的表觀熒光動力學參數(shù)，獲取其PS II的實際量子 產(chǎn)量ΦΡΞΙΙ、光化學淬滅系數(shù)qP、非光化學淬滅系數(shù)qN和光合電子傳遞的相對速率rETR 值。
全文摘要
本發(fā)明公開了一種測定植物組培苗光合能力的方法，它包含以下步驟第一，將含有組培苗的組培瓶，經(jīng)過暗適應(yīng)后，使組培苗的葉片暴露在調(diào)制熒光成像系統(tǒng)的探頭探測的范圍內(nèi)；第二，獲取葉綠素熒光圖像，從熒光圖像上選點記錄組培苗葉片的基礎(chǔ)葉綠素熒光信息；第三，測定該組培苗葉片的表觀熒光動力學參數(shù)，獲取葉綠素熒光參數(shù)值；第四，測定同質(zhì)組培瓶相同位置對熒光的透過率；第五、根據(jù)測定的組培瓶對熒光的透過率，將通過組培瓶觀察的表觀葉綠素熒光參數(shù)換算成無組培瓶阻擋熒光通過的組培苗實際葉綠素熒光參數(shù)，這些參數(shù)即表征該組培苗的光合能力。本發(fā)明能在線、無菌、動態(tài)、快速測定組培苗自養(yǎng)能力，為比較不同的組培苗的自養(yǎng)能力提供依據(jù)。
文檔編號A01G7/00GK101953299SQ20101026365
公開日2011年1月26日 申請日期2010年8月26日 優(yōu)先權(quán)日2010年8月26日
發(fā)明者劉叢強, 劉瑩, 吳沿友, 朱詠莉, 王寶利, 趙寬, 魯珊 申請人:中國科學院地球化學研究所