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      一種基于pcr-ldr技術(shù)的檢測拷貝數(shù)變異的方法

      文檔序號:414471閱讀:2389來源:國知局
      專利名稱:一種基于pcr-ldr技術(shù)的檢測拷貝數(shù)變異的方法
      技術(shù)領(lǐng)域
      本發(fā)明涉及生物技術(shù)領(lǐng)域,尤其涉及基于多重競爭性PCR以及LDR技術(shù)檢測拷貝數(shù)變異的方法,應(yīng)用于生物科學(xué)研究與臨床分子診斷。
      背景技術(shù)
      拷貝數(shù)變異(copy number variations, CNVs)是近年來發(fā)現(xiàn)的基因組多樣性的新形式,它是指與參考序列相比,基因組中l(wèi)kb 3Mb的DNA片段的結(jié)構(gòu)變異現(xiàn)象。CNVs廣泛存于基因組中,與一些遺傳性疾病的發(fā)生相關(guān),對人類抗病性和易感性表型等變異有重要影響。這就要求建立一種快速、準(zhǔn)確和低成本的CNVs分型檢測技術(shù)。
      隨著生物技術(shù)的發(fā)展,不同的研究小組相繼開發(fā)了許多的檢測方法,主要包括以雜交為基礎(chǔ)和以PCR為基礎(chǔ)的檢測技術(shù)。前者可以在全基因組水平上對CNVs進(jìn)行檢測,代表技術(shù)有微陣列比較基因雜交(SolinasToldo, Lampel et al Genes Chromosomes Cancer. 1997Dec; 20 (4) : 399-407)、全基因組 SNP 芯片(Irving, Bloodworth et al. Cancer Res. 2005Aprl5; 65 (8) : 3053-8)、代表性寡核昔酸微陣列技術(shù)(Lucito, Healy et al. Genome Res. 20030ct; 13 (10) :2291-305. Epub2003Sepl5.)等,其優(yōu)點(diǎn)是通量高且易于實(shí)現(xiàn)自動(dòng)化,但是普遍存在分辨率低、成本高和周期長的缺點(diǎn)。后者主要是針對具體的目標(biāo)位點(diǎn)進(jìn)行檢測,代表性的技術(shù)有實(shí)時(shí)熒光定量PCR、多重連接探針擴(kuò)增技術(shù)(MLPA) (Schouten, McElgunn et al. Nucleic Acids Res. 2002Junl5; 30 (12) : e57)和多重可擴(kuò)增探針雜交(MAPH) (Armour, Sismani et al. Nucleic Acids Res. 2000Janl5; 28 (2) :605-9.) 等。實(shí)時(shí)熒光定量技術(shù)有操作簡單、重復(fù)性好、實(shí)驗(yàn)周期短等優(yōu)點(diǎn),但是檢測通量較??;與實(shí)時(shí)熒光定量PCR相比,MLPA和MAPH的檢測通量有了很大提高,不過PCR微環(huán)境的變化會導(dǎo)致不同位點(diǎn)不能完全同步擴(kuò)增,而且PCR的平臺效應(yīng)也會影響檢測結(jié)果。以PCR為基礎(chǔ)的檢測技術(shù)存在一個(gè)共同的缺陷就是待測樣本和對照樣本是分開檢測的,這樣兩者PCR效率的差異會引起檢測結(jié)果的偏差。
      競爭性PCR克服了這個(gè)缺陷,實(shí)現(xiàn)CNVs的快速、準(zhǔn)確、經(jīng)濟(jì)的檢測。在PCR擴(kuò)增過程中,PCR產(chǎn)物的量可以用公式Y(jié)=A (1+R) n來表示,其Y表示PCR產(chǎn)物的量,A表示初始模板的量,R表示PCR的擴(kuò)增效率,η表示PCR的循環(huán)數(shù),當(dāng)PCR擴(kuò)增效率相同時(shí),PCR產(chǎn)物的量與初始模板的量成正比。競爭性PCR利用了這一原理,在同一 PCR反應(yīng)體系中涉及兩組模板,一組是待測樣本,另一組是合成的一段核酸序列,用作內(nèi)對照,兩組模板僅在目標(biāo)序列長度上(存在一些堿基的插入或缺失)存在一些差異,其他反應(yīng)條件一致,因此兩者擴(kuò)增效率接近一致,兩種擴(kuò)增產(chǎn)物量的比直觀的反映了初始模板(待測樣本和內(nèi)對照不存在拷貝數(shù)差異)量的比,可以根據(jù)內(nèi)對照的初始模板的量來計(jì)算待測樣本的濃度。在檢測拷貝數(shù)變異時(shí),當(dāng)兩模板具有相同的濃度或消除了濃度差異帶來的影響時(shí),PCR產(chǎn)物量的比值就反映模板拷貝數(shù)的差異。PRT 法(Paralogue Ratio Test) (Armour, Palla et al. Nucleic Acids Res. 2007; 35 (3) :el9. Epub2006Decl4)是基于競爭性PCR 的一種檢測 CVNs 的一種方法,此方法的優(yōu)點(diǎn)是待測位點(diǎn)和內(nèi)對照共存于基因組序列中,但是缺點(diǎn)也是很明顯的,只能針對有限的基因位點(diǎn)進(jìn)行檢測,而且針對不同檢測位點(diǎn)都要設(shè)計(jì)一對熒光引物,加大了實(shí)驗(yàn)成本。
      對于一些基于多重競爭性PCR的定量技術(shù),因?yàn)槠銹CR產(chǎn)物的長度必須能清晰分離,這對PCR產(chǎn)物的設(shè)計(jì)提出了較高的要求。對于一些PCR產(chǎn)物長度相近的情況則無法進(jìn)行檢測。本發(fā)明就是利用LDR技術(shù),對PCR產(chǎn)物的長度不提出要求,解決了多重PCR設(shè)計(jì)的難點(diǎn)。發(fā)明內(nèi)容
      所要解決的技術(shù)問題
      本發(fā)明要解決的技術(shù)問題是克服現(xiàn)有技術(shù)一些多重競爭性PCR產(chǎn)物長度設(shè)計(jì)難點(diǎn)的問題,提供一種成本低、通量高、樣本需求低、檢測靈敏性高、普及度廣的CNVs檢測方法。
      技術(shù)方案
      在總結(jié)現(xiàn)有技術(shù)中各種檢測方法的優(yōu)缺點(diǎn)基礎(chǔ)上,發(fā)明人經(jīng)過自主創(chuàng)新研發(fā),令人驚奇地發(fā)現(xiàn)通過如下設(shè)計(jì),可以成功解決上述技術(shù)問題,并且成功應(yīng)用于生物科學(xué)研究與臨床分子診斷等領(lǐng)域。本發(fā)明的目的通過以下技術(shù)方案實(shí)現(xiàn)
      本發(fā)明的技術(shù)方案之一是提供一種多重競爭性PCR和LDR聯(lián)合檢測拷貝數(shù)變異的方法,包括以下步驟
      (I)提供多重競爭性PCR引物所述的多重競爭性PCR引物由分別針對待測區(qū)段和參照區(qū)段設(shè)計(jì)的至少一對待測區(qū)段引物和至少一對參照區(qū)段引物組成,TM值> 62°C,長度范圍為18飛Obp,所述多重競爭性PCR引物所產(chǎn)生的不同擴(kuò)增產(chǎn)物片段間的長度差異沒有要求;
      (2)提供內(nèi)對照序列通過全基因合成法合成一條與所述多重競爭性PCR的擴(kuò)增產(chǎn)物片段之一相比僅一個(gè)替換堿基的差異的序列,且所述替換堿基的位置不在引物結(jié)合區(qū);或者通過載體克隆法將PCR產(chǎn)物克隆到質(zhì)粒上,并在某個(gè)堿基上導(dǎo)入替換突變,且所述替換突變的堿基的位置不在引物結(jié)合區(qū);
      (3)多重競爭性PCR反應(yīng)將含待測區(qū)段和參照區(qū)段的待測樣本和對照樣本分別與所述內(nèi)對照的稀釋液混合在一起,所述待測樣本和所述對照樣本的DNA分子數(shù)分別與所述內(nèi)對照稀釋液的DNA分子數(shù)相差10倍范圍內(nèi),進(jìn)行多重競爭性PCR反應(yīng);
      (4)多重LDR測序反應(yīng)取所述多重競爭性PCR反應(yīng)的產(chǎn)物與含所述測序探針的 LDR反應(yīng)體系混合,進(jìn)行LDR測序反應(yīng);
      (5) LDR測序產(chǎn)物電泳分離對所述LDR測序反應(yīng)的產(chǎn)物進(jìn)行電泳分離,利用LDR 測序反應(yīng)將單堿基差異轉(zhuǎn)變成序列長度差異的原理將所述待測樣本或所述對照樣本分別與內(nèi)對照產(chǎn)物區(qū)分開、且利用LDR測序產(chǎn)物的濃度和模板濃度成線性關(guān)系的原理,通過檢測LDR測序產(chǎn)物在電泳分離后的濃度分別獲得所述待測樣本、所述對照樣本、和所述內(nèi)對照所對應(yīng)的各個(gè)模板的相對濃度,所述的相對濃度以電泳分離片段的峰高和/或峰面積表示;
      (6)數(shù)據(jù)分析
      i.將每個(gè)待測區(qū)段和參照區(qū)段的峰高和/或峰面積(S)和內(nèi)對照的峰高和/或峰面積(I)作比,得到每個(gè)待測區(qū)段和參照區(qū)段的比值(S/I);
      以一個(gè)參照區(qū)段的比值為標(biāo)準(zhǔn),將其他待測區(qū)段和參照區(qū)段的比值分別同其作比,進(jìn)行數(shù)據(jù)內(nèi)部標(biāo)化;
      iii.將待測樣本和對照樣本的內(nèi)部標(biāo)化值作比,獲得待測樣本與對照樣本的比值,該比值乘以對照樣本的拷貝數(shù),得到待測樣本的拷貝數(shù)。
      上述技術(shù)方案的優(yōu)選方式之一為,所述待測區(qū)段引物和所述參照區(qū)段引物的長度范圍均為38 45bp。
      上述技術(shù)方案的優(yōu)選方式之二為,所述多重PCR引物對應(yīng)的擴(kuò)增產(chǎn)物的長度范圍為 120 1000bp。
      上述技術(shù)方案的優(yōu)選方式之三為,所述LDR測序探針對應(yīng)的產(chǎn)物的長度范圍為 70 200bp。
      上述技術(shù)方案的優(yōu)選方式之四為,所述的多重競爭性PCR引物含一到二十五對針對不同待測基因的待測區(qū)段引物。作為另一種具體實(shí)施方式
      ,所述的多重競爭性PCR引物由一對到二十對針對不同待測基因的待測區(qū)段引物和一對到六對參照引物組成。作為又一種具體實(shí)施方式
      ,所述的多重競爭性PCR引物由一對到十對針對不同待測基因的待測區(qū)段弓I物和一對到三對參照弓I物組成。
      在多重PCR技術(shù)領(lǐng)域,多至幾十對的在序列上無同源性的引物對在同一 PCR反應(yīng)體系中分別實(shí)現(xiàn)獨(dú)立的擴(kuò)增反應(yīng)已經(jīng)是常規(guī)技術(shù)?,F(xiàn)有技術(shù)也提供了多于二十對、三十對、 乃至更多對引物在同一 PCR反應(yīng)體系中分別實(shí)現(xiàn)獨(dú)立的擴(kuò)增反應(yīng)的原理、方案、和具體操作指導(dǎo),即現(xiàn)有技術(shù)完整地提供了實(shí)現(xiàn)其他實(shí)施方式的充分和必要條件;本發(fā)明的具體實(shí)施方式
      或?qū)嵤├谶@樣的技術(shù)背景下,不應(yīng)被視為對其他實(shí)施方式的限制。
      上述技術(shù)方案的優(yōu)選方式之五為,所述的測序探針由四色熒光標(biāo)記。作為具體實(shí)施方式
      之一,所述的測序探針由藍(lán)色熒光FAM標(biāo)記。
      本領(lǐng)域的技術(shù)人員通過現(xiàn)有的四色熒光標(biāo)記技術(shù)和ABI測序儀(如3130/3730)等的四色熒光檢測系統(tǒng),可以非常容易地將本發(fā)明的藍(lán)色熒光FAM標(biāo)記LDR測序探針的實(shí)施例擴(kuò)展至兩色、三色或者四色標(biāo)記的熒光探針,以支持二十五對乃至更多對多重競爭性PCR 引物的測序分析,完成二十五個(gè)乃至更多不同待測基因的拷貝數(shù)檢測。
      本發(fā)明的技術(shù)方案之二是一種基于上述方法的試劑盒,包括提供多重競爭性PCR 引物由至少一對待測區(qū)段引物和至少一對參照區(qū)段引物組成、定量的內(nèi)對照DNA、LDR熒光標(biāo)記測序探針、和/或多重競爭性PCR的反應(yīng)的試劑、和/或LDR測序反應(yīng)的試劑。
      本發(fā)明的技術(shù)方案之三是提供上述的試劑盒在檢測人類基因拷貝數(shù)變異中的應(yīng)用。
      有益效果
      本發(fā)明經(jīng)過巧妙設(shè)計(jì)檢測方案、令人驚奇地具有以下優(yōu)點(diǎn)
      I、多重競爭性PCR設(shè)計(jì)引物和產(chǎn)物時(shí),并不需要考慮分離不同產(chǎn)物而設(shè)計(jì)產(chǎn)物長度差異。
      2、適用性廣。對所有的基于毛細(xì)管電泳的測序儀都適用。
      3、如果利用靈長類其他物種和人類的序列高度同源性,從靈長類的核酸模板入手,可以通過PCR克隆法快速制備內(nèi)對照。
      4、實(shí)驗(yàn)周期短。相對于MLPA技術(shù)(需要兩天)來講,一天內(nèi)就可以得到實(shí)驗(yàn)結(jié)果。 可對少量樣本多個(gè)基因進(jìn)行同時(shí)檢測,大大縮短了實(shí)驗(yàn)周期,提高了實(shí)驗(yàn)效率。


      圖I為一個(gè)參照區(qū)段和三個(gè)目標(biāo)區(qū)段的多重PCR的試驗(yàn)結(jié)果。R為參照區(qū)段;I、 2、3為3個(gè)檢測區(qū)段。
      圖2為LDR技術(shù)的基本原理圖解。
      圖3為實(shí)施例I中樣本檢測結(jié)果示意圖。
      具體實(shí)施方式
      下面結(jié)合具體實(shí)施例,進(jìn)一步闡明本發(fā)明,應(yīng)理解,實(shí)施例僅用于說明本發(fā)明而不用于限制本發(fā)明的范圍。此外應(yīng)理解,在閱讀了本發(fā)明講授的內(nèi)容之后,本領(lǐng)域技術(shù)人員可以對本發(fā)明作各種改動(dòng)或修改,這些等價(jià)形式有同樣落于本申請所附權(quán)利要求書所限定的范圍。
      實(shí)施例I
      利用本發(fā)明所述的方法對VIPR2基因區(qū)段(GeneBank序列號NT_007741)和10號染色體、5號染色體(GeneBank序列號NT_030059、NT_006576)上參照區(qū)段進(jìn)行了拷貝數(shù)的檢測,其中在VIPR2的基因區(qū)段中設(shè)計(jì)3個(gè)PCR檢測區(qū)段。
      I、多重PCR引物的設(shè)計(jì)
      多重PCR引物的設(shè)計(jì)根據(jù)待測區(qū)段和參照區(qū)段選擇我們共設(shè)計(jì)了 5對特異引物, 要求TM值彡62°C,擴(kuò)增產(chǎn)物的長度在10(T500bp之間。所有的引物均經(jīng)過Blast和Oligo mask軟件的分析,從而減少非特異擴(kuò)增和引物二聚體。
      序列中多重競爭性PCR引物的序列用下劃線表示,連接位點(diǎn)堿基用斜體小寫字符表不。
      所設(shè)計(jì)核酸序列如下所示
      >10號染色體片段(5,-3,)
      權(quán)利要求
      1. 一種多重競爭性PCR和LDR聯(lián)合檢測拷貝數(shù)變異的方法,包括以下步驟 (1)提供多重競爭性PCR引物所述的多重競爭性PCR引物由分別針對待測區(qū)段和參照區(qū)段設(shè)計(jì)的至少一對待測區(qū)段引物和至少一對參照區(qū)段引物組成,TM值> 62°C,長度范圍為18飛Obp,所述多重競爭性PCR引物所產(chǎn)生的不同擴(kuò)增產(chǎn)物片段間的長度差異沒有要求; (2)提供內(nèi)對照序列通過全基因合成法合成一條與所述多重競爭性PCR的擴(kuò)增產(chǎn)物片段之一相比僅一個(gè)替換堿基的差異的序列,且所述替換堿基的位置不在引物結(jié)合區(qū);或者通過載體克隆法將PCR產(chǎn)物克隆到質(zhì)粒上,并在某個(gè)堿基上導(dǎo)入替換突變,且所述替換突變的堿基的位置不在引物結(jié)合區(qū); (3)多重競爭性PCR反應(yīng)將含待測區(qū)段和參照區(qū)段的待測樣本和對照樣本分別與所述內(nèi)對照的稀釋液混合在一起,所述待測樣本和所述對照樣本的DNA分子數(shù)分別與所述內(nèi)對照稀釋液的DNA分子數(shù)相差10倍范圍內(nèi),進(jìn)行多重競爭性PCR反應(yīng); (4)多重LDR測序反應(yīng)取所述多重競爭性PCR反應(yīng)的產(chǎn)物與含所述測序探針的LDR反應(yīng)體系混合,進(jìn)行LDR測序反應(yīng); (5)LDR測序產(chǎn)物電泳分離對所述LDR測序反應(yīng)的產(chǎn)物進(jìn)行電泳分離,利用LDR測序反應(yīng)將單堿基差異轉(zhuǎn)變成序列長度差異的原理將所述待測樣本或所述對照樣本分別與內(nèi)對照產(chǎn)物區(qū)分開、且利用LDR測序產(chǎn)物的濃度和模板濃度成線性關(guān)系的原理,通過檢測LDR測序產(chǎn)物在電泳分離后的濃度分別獲得所述待測樣本、所述對照樣本、和所述內(nèi)對照所對應(yīng)的各個(gè)模板的相對濃度,所述的相對濃度以電泳分離片段的峰高和/或峰面積表示; (6)數(shù)據(jù)分析 1.將每個(gè)待測區(qū)段和參照區(qū)段的峰高和/或峰面積(S)和內(nèi)對照的峰高和/或峰面積(I)作比,得到每個(gè)待測區(qū)段和參照區(qū)段的比值(S/I); 以一個(gè)參照區(qū)段的比值為標(biāo)準(zhǔn),將其他待測區(qū)段和參照區(qū)段的比值分別同其作比,進(jìn)行數(shù)據(jù)內(nèi)部標(biāo)化; iii.將待測樣本和對照樣本的內(nèi)部標(biāo)化值作比,獲得待測樣本與對照樣本的比值,該比值乘以對照樣本的拷貝數(shù),得到待測樣本的拷貝數(shù)。
      2.根據(jù)權(quán)利要求I所述的檢測拷貝數(shù)變異的方法,其特征在于,所述待測區(qū)段引物和所述參照區(qū)段引物的長度范圍均為38 45bp。
      3.根據(jù)權(quán)利要求I所述的檢測拷貝數(shù)變異的方法,其特征在于,所述多重PCR引物對應(yīng)的擴(kuò)增產(chǎn)物的長度范圍為12(Tl000bp。
      4.根據(jù)權(quán)利要求I所述的檢測拷貝數(shù)變異的方法,其特征在于,所述LDR測序探針對應(yīng)的產(chǎn)物的長度范圍為7(T200bp。
      5.根據(jù)權(quán)利要求I所述的檢測拷貝數(shù)變異的方法,其特征在于,所述的多重競爭性PCR引物含一到二十五對針對不同待測基因的待測區(qū)段引物。
      6.根據(jù)權(quán)利要求5所述的檢測拷貝數(shù)變異的方法,其特征在于,所述的多重競爭性PCR引物由一對到二十對針對不同待測基因的待測區(qū)段引物和一對到六對參照引物組成。
      7.根據(jù)權(quán)利要求6所述的檢測拷貝數(shù)變異的方法,其特征在于,所述的多重競爭性PCR引物由一對到十對針對不同待測基因的待測區(qū)段引物和一對到三對參照引物組成。
      8.根據(jù)權(quán)利要求I所述的檢測拷貝數(shù)變異的方法,其特征在于,所述的測序探針由四色突光標(biāo)記。
      9.一種基于權(quán)利要求I所述的檢測拷貝數(shù)變異的方法的試劑盒,包括提供多重競爭性PCR引物由至少一對待測區(qū)段引物和至少一對參照區(qū)段引物組成、定量的內(nèi)對照DNA、LDR熒光標(biāo)記測序探針、和/或多重競爭性PCR的反應(yīng)的試劑、和/或LDR測序反應(yīng)的試劑。
      10.權(quán)利要求9所述的試劑盒在檢測人類基因拷貝數(shù)變異中的應(yīng)用。
      全文摘要
      本發(fā)明涉及基于通用熒光引物的多重競爭性PCR檢測拷貝數(shù)變異的方法,包括下列步驟(1)提供多重競爭性PCR引物,由至少一對待測區(qū)段引物和至少一對參照區(qū)段引物組成;(2)提供競爭性內(nèi)對照模板,內(nèi)對照模板序列與實(shí)際序列在序列中僅有一個(gè)堿基替換;(3)多重競爭性PCR反應(yīng);(4)LDR反應(yīng);和(5)數(shù)據(jù)分析。本發(fā)明還提供基于以上檢測方法的試劑盒,適用于5~25個(gè)基因/反應(yīng)的拷貝數(shù)變異的檢測,是一種快速、中通量、經(jīng)濟(jì)的拷貝數(shù)變異檢測方案。
      文檔編號C12Q1/68GK102978280SQ20121043210
      公開日2013年3月20日 申請日期2012年11月1日 優(yōu)先權(quán)日2012年11月1日
      發(fā)明者陸炯, 肖君華, 陳軼群 申請人:上海翼和應(yīng)用生物技術(shù)有限公司
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