本發(fā)明涉及一種鑒定雞細(xì)小病毒的特異引物組合及其應(yīng)用。
背景技術(shù):
雞細(xì)小病毒(Chincken parvovirus,ChPV)是引起雞腸道疾病重要的病原體之一,可以引起以腹瀉、精神抑郁、體溫調(diào)節(jié)障礙、生長(zhǎng)遲緩、增加飼料消耗等為特征的急性或慢性腸道性疾病、矮小綜合癥、營(yíng)養(yǎng)不良綜合癥。ChPV在雞群中普遍存在,主要侵害雛雞,其中以商品肉雞感染率較高、蛋雞或種雞次之。自2010年以來,北美、波蘭、匈牙利、克羅地亞、巴西、南韓等國(guó)家相繼暴發(fā)了該病,給養(yǎng)雞業(yè)造成較大的經(jīng)濟(jì)損失,但是,在中國(guó)尚未有雞細(xì)小病毒流行病學(xué)調(diào)查的報(bào)道。因此,建立ChPV的快速檢測(cè)方法,是有效防制我國(guó)ChPV的技術(shù)保障。
目前,鑒定病毒的方法主要依靠傳統(tǒng)的病毒分離、瓊脂擴(kuò)散試驗(yàn)和ELISA等,這些方法通常具有耗時(shí)費(fèi)力且敏感性不高等弊端。巢式PCR,又稱套式PCR,使用2對(duì)PCR引物進(jìn)行擴(kuò)增,巢式PCR的第一對(duì)PCR引物擴(kuò)增片段和普通PCR相似,第二對(duì)引物稱為巢式引物,結(jié)合在第一次PCR產(chǎn)物內(nèi)部,使得第二次PCR擴(kuò)增片段短于第一次擴(kuò)增。巢式PCR的優(yōu)點(diǎn)在于,如果第一次擴(kuò)增產(chǎn)生了錯(cuò)誤片段,通過第二次引物的配對(duì)擴(kuò)增降低錯(cuò)誤的擴(kuò)增,因此,巢式PCR的擴(kuò)增非常的特異。同時(shí),由于第一次擴(kuò)增是對(duì)模板進(jìn)行放大,因此巢式PCR要比常規(guī)PCR檢測(cè)的敏感性要高。目前尚未有關(guān)于建立ChPV半巢式PCR檢測(cè)方法的研究報(bào)道。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的是提供一種鑒定雞細(xì)小病毒的特異引物組合及其應(yīng)用。
本發(fā)明提供了一種引物組合,包括引物ChPV-F1和引物ChPV-R;所述引物ChPV-F1和引物ChPV-R的靶序列含有特異DNA分子甲;所述特異DNA分子甲為如下(a1)或(a2):
(a1)序列表的序列4所示的DNA分子;
(a2)將序列4經(jīng)過一個(gè)或幾個(gè)核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且與序列4具有相同功能的DNA分子。
所述引物ChPV-F1和引物ChPV-R的靶序列具體可為所述特異DNA分子甲。
所述引物ChPV-F1具體為如下(b1)或(b2):
(b1)序列表的序列1所示的單鏈DNA分子;
(b2)將序列1經(jīng)過一個(gè)或幾個(gè)核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且與序列1具有相同功能的DNA分子;
所述引物ChPV-R具體為如下(b3)或(b4):
(b3)序列表的序列2所示的單鏈DNA分子;
(b4)將序列2經(jīng)過一個(gè)或幾個(gè)核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且與序列2具有相同功能的DNA分子。
所述引物組合還包括引物ChPV-F2;所述引物ChPV-F2和所述引物ChPV-R的靶序列含有特異DNA分子乙;所述特異DNA分子乙為如下(c1)或(c2):
(c1)序列表的序列5所示的DNA分子;
(c2)將序列5經(jīng)過一個(gè)或幾個(gè)核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且與序列5具有相同功能的DNA分子。
所述引物ChPV-F2和引物ChPV-R的靶序列具體可為所述特異DNA分子乙。
所述引物ChPV-F2具體為如下(d1)或(d2):
(d1)序列表的序列3所示的單鏈DNA分子;
(d2)將序列3經(jīng)過一個(gè)或幾個(gè)核苷酸的取代和/或缺失和/或添加且與序列3具有相同功能的DNA分子。
以上任一所述引物組合的用途為如下(e1)至(e4)中的任意一種:
(e1)鑒定待測(cè)病毒是否為雞細(xì)小病毒;
(e2)制備用于鑒定待測(cè)病毒是否為雞細(xì)小病毒的試劑盒;
(e3)鑒定待測(cè)樣本是否含有雞細(xì)小病毒;
(e4)制備用于鑒定待測(cè)樣本是否含有雞細(xì)小病毒的試劑盒。
本發(fā)明還保護(hù)以上任一所述引物組合的應(yīng)用,為如下(e1)至(e4)中的任意一種:
(e1)鑒定待測(cè)病毒是否為雞細(xì)小病毒;
(e2)制備用于鑒定待測(cè)病毒是否為雞細(xì)小病毒的試劑盒;
(e3)鑒定待測(cè)樣本是否含有雞細(xì)小病毒;
(e4)制備用于鑒定待測(cè)樣本是否含有雞細(xì)小病毒的試劑盒。
本發(fā)明還保護(hù)含有以上任一所述所述引物組合的試劑盒;所述試劑盒的用途為如下(f1)或(f2):
(f1)鑒定待測(cè)病毒是否為雞細(xì)小病毒;
(f2)鑒定待測(cè)樣本是否含有雞細(xì)小病毒。
本發(fā)明還保護(hù)一種鑒定待測(cè)病毒是否為雞細(xì)小病毒的方法,包括如下步驟(g1)一(g3):
(g1)提取待測(cè)病毒的基因組DNA;
(g2)以步驟(g1)提取的基因組DNA為模板,采用所述引物ChPV-F1和引物ChPV-R進(jìn)行第一輪PCR擴(kuò)增;
(g3)以步驟(g2)得到的第一輪PCR產(chǎn)物為模板,采用所述引物ChPV-F2和所述引物ChPV-R進(jìn)行第二輪PCR擴(kuò)增,如果第二輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物中含有176-196bp的DNA片段、待測(cè)病毒為或候選為雞細(xì)小病毒,如果第二輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物中不含有176-196bp的DNA片段、待測(cè)病毒為或候選為非雞細(xì)小病毒。
本發(fā)明還保護(hù)一種鑒定待測(cè)病毒是否為雞細(xì)小病毒的方法,包括如下步驟:檢測(cè)待測(cè)病毒的基因組DNA中是否含有所述特異DNA分子甲,如果所述基因組DNA中含有所述特異DNA分子甲、待測(cè)病毒為或候選為雞細(xì)小病毒,如果所述基因組DNA中不含有所述特異DNA分子甲、待測(cè)病毒為或候選為非雞細(xì)小病毒。
本發(fā)明還保護(hù)一種鑒定待測(cè)病毒是否為雞細(xì)小病毒的方法,包括如下步驟:檢測(cè)待測(cè)病毒的基因組DNA中是否含有所述特異DNA分子乙,如果所述基因組DNA中含有所述特異DNA分子乙、待測(cè)病毒為或候選為雞細(xì)小病毒,如果所述基因組DNA中不含有所述特異DNA分子乙、待測(cè)病毒為或候選為非雞細(xì)小病毒。
本發(fā)明還保護(hù)一種鑒定待測(cè)樣本是否含有雞細(xì)小病毒的方法,包括如下步驟(h1)一(h3):
(h1)提取待測(cè)樣本的總DNA;
(h2)以步驟(h1)提取的總DNA為模板,采用所述引物ChPV-F1和引物ChPV-R進(jìn)行第一輪PCR擴(kuò)增;
(h3)以步驟(h2)得到的第一輪PCR產(chǎn)物為模板,采用所述引物ChPV-F2和所述引物ChPV-R進(jìn)行第二輪PCR擴(kuò)增,如果第二輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物中含有176-196bp的DNA片段、待測(cè)樣本含有或疑似含有雞細(xì)小病毒,如果第二輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物中不含有176-196bp的DNA片段、待測(cè)樣本不含有或疑似不含有雞細(xì)小病毒。
本發(fā)明還保護(hù)一種鑒定待測(cè)樣本是否含有雞細(xì)小病毒的方法,包括如下步驟:檢測(cè)待測(cè)樣本的總DNA中是否含有所述特異DNA分子甲,如果所述總DNA中含有所述特異DNA分子甲、待測(cè)樣本含有或疑似含有雞細(xì)小病毒,如果所述總DNA中不含有所述特異DNA分子甲、待測(cè)樣本不含有或疑似不含有雞細(xì)小病毒。
本發(fā)明還保護(hù)一種鑒定待測(cè)樣本是否含有雞細(xì)小病毒的方法,包括如下步驟:檢測(cè)待測(cè)樣本的總DNA中是否含有所述特異DNA分子乙,如果所述總DNA中含有所述特異DNA分子乙、待測(cè)樣本含有或疑似含有雞細(xì)小病毒,如果所述總DNA中不含有所述特異DNA分子乙、待測(cè)樣本不含有或疑似不含有雞細(xì)小病毒。
以上任一所述176-196bp的DNA片段具體為186bp的DNA片段。
所述DNA片段具體可為如下(i1)或(i2):
(i1)序列表的序列5所示的DNA分子;
(i2)與序列表的序列5具有97%以上同源性的DNA分子。
以上任一所述待測(cè)病毒具體可為雞細(xì)小病毒、雞新城疫病毒、馬立克病毒、H9亞型禽流感病毒、傳染性支氣管炎病毒或傳染性喉氣管炎病毒。
以上任一所述待測(cè)樣本具體可為雞病料,例如雞喉頭拭子、雞泄殖腔拭子、生鮮雞肉、生鮮雞內(nèi)臟、雞肉加工品、雞內(nèi)臟加工品等。
以上任一所述方法中,所述第一輪PCR擴(kuò)增的退火溫度具體為56.6℃。
以上任一所述方法中,所述第二輪PCR擴(kuò)增的退火溫度具體為54.3℃。
以上任一所述第一輪PCR擴(kuò)增的反應(yīng)體系中,ChPV-F1和ChPV-R的濃度均為10pmol/μL。
以上任一所述第二輪PCR擴(kuò)增的反應(yīng)體系中,ChPV-F2和ChPV-R的濃度均為10pmol/μL。
以上任一所述第一輪PCR擴(kuò)增的反應(yīng)體系(25μL)具體可為:2×PCR Mix 12.5μL,模板1μL(5.62fg-5.62ng),ChPV-F1和ChPV-R各1μL,最后用ddH2O補(bǔ)足至25.0μL。
以上任一所述第二輪PCR擴(kuò)增的反應(yīng)體系(25μL)具體可為:2×PCR Mix 12.5μL,模板1μL(5.62fg-5.62ng),ChPV-F2和ChPV-R各1μL,最后用ddH2O補(bǔ)足至25.0μL。
以上任一所述第一輪PCR的反應(yīng)程序具體可為:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,56.6℃退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
以上任一所述第二輪PCR的反應(yīng)程序具體可為:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,54.3℃退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
本發(fā)明設(shè)計(jì)合成用于檢測(cè)ChPV的3條特異性引物,能成功擴(kuò)增出特異性目的片段,且優(yōu)化后的ChPV半巢式PCR能夠確保一定溫度范圍內(nèi)擴(kuò)增效率的相對(duì)平衡。特異性試驗(yàn)和敏感性試驗(yàn)表明,該ChPV半巢式PCR能夠成功擴(kuò)增出186bp的ChPV特異性片段,相反,對(duì)AIV H9、NDV、MDV、IBV、AILTV等5種病原體不敏感,具有良好的特異性;該ChPV半巢式PCR能檢出5.62fg的ChPV核酸模板,敏感性較高,能夠在臨床上滿足ChPV感染檢測(cè)的要求。
本發(fā)明建立的方法可用于快速檢測(cè)ChPV的感染、監(jiān)控雞群感染ChPV后的排毒情況及臨床上ChPV流行病學(xué)的監(jiān)測(cè),具有簡(jiǎn)便快速、特異性好、敏感性高等特點(diǎn),本發(fā)明為ChPV的快速檢測(cè)提供了新方法,對(duì)有效防制該病毒引起的疫病具有重要意義。
附圖說明
圖1為實(shí)施例2中半巢式PCR反應(yīng)優(yōu)化對(duì)應(yīng)的電泳圖。
圖2為實(shí)施例3中特異性檢測(cè)對(duì)應(yīng)的電泳圖。
圖3為實(shí)施例4中敏感性檢測(cè)對(duì)應(yīng)的電泳圖。
圖4為實(shí)施例5中臨床樣品檢測(cè)對(duì)應(yīng)的電泳圖。
具體實(shí)施方式
以下的實(shí)施例便于更好地理解本發(fā)明,但并不限定本發(fā)明。下述實(shí)施例中的實(shí)驗(yàn)方法,如無特殊說明,均為常規(guī)方法。下述實(shí)施例中所用的試驗(yàn)材料,如無特殊說明,均為自常規(guī)生化試劑商店購(gòu)買得到的。以下實(shí)施例中的定量試驗(yàn),均設(shè)置三次重復(fù)實(shí)驗(yàn),結(jié)果取平均值。
雞細(xì)小病毒(chicken parvovirus,縮寫為ChPV):參考文獻(xiàn):Day J M,Zsak L.Determination and analysis of the full-length chicken parvovirus genome.[J].Virology,2010,399(1):59-64.;公眾可以從廣西壯族自治區(qū)獸醫(yī)研究所獲得。
雞新城疫病毒(NDV):參考文獻(xiàn):謝芝勛,謝麗基,劉加波,等.禽流感和新城疫病毒半巢式熒光定量RT-PCR檢測(cè)方法的建立[J].生物技術(shù)通訊,2008,19(3):410-413.;公眾可以從廣西壯族自治區(qū)獸醫(yī)研究所獲得。
馬立克病毒(MDV):參考文獻(xiàn):鄧顯文,謝芝勛,謝志勤,等.雞傳染性貧血病毒病LAMP快速可視化檢測(cè)方法的建立[J].家畜生態(tài)學(xué)報(bào),2011,32(6):57-60.;公眾可以從廣西壯族自治區(qū)獸醫(yī)研究所獲得。
H9亞型禽流感病毒(AIV H9):參考文獻(xiàn):謝芝勛,謝麗基,劉加波,等.禽流感和新城疫病毒半巢式熒光定量RT-PCR檢測(cè)方法的建立[J].生物技術(shù)通訊,2008,19(3):410-413.;公眾可以從廣西壯族自治區(qū)獸醫(yī)研究所獲得。
傳染性支氣管炎病毒(IBV):參考文獻(xiàn):謝芝勛,謝麗基,劉加波,等.禽流感和新城疫病毒半巢式熒光定量RT-PCR檢測(cè)方法的建立[J].生物技術(shù)通訊,2008,19(3):410-413.;公眾可以從廣西壯族自治區(qū)獸醫(yī)研究所獲得。
傳染性喉氣管炎病毒(ILTV):參考文獻(xiàn):謝芝勛,謝麗基,劉加波,等.禽流感和新城疫病毒半巢式熒光定量RT-PCR檢測(cè)方法的建立[J].生物技術(shù)通訊,2008,19(3):410-413.;公眾可以從廣西壯族自治區(qū)獸醫(yī)研究所獲得。
2×PCR Mix:寶生物工程(大連)有限公司。
實(shí)施例1、引物設(shè)計(jì)
進(jìn)行大量序列分析、比對(duì)獲得了用于鑒定雞細(xì)小病毒的若干引物。將各個(gè)引物進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn),比較靈敏度、特異性等性能,最終得到用于鑒定雞細(xì)小病毒的一套引物組合。
用于鑒定雞細(xì)小病毒的特異性引物對(duì)由如下三條引物組成(5’→3’):
ChPV-F1(序列表的序列1):ATAACGATATCACTCAAGTTTCCAA;
ChPV-F2(序列表的序列2):GCTGCAATCAGAGCAAGATG;
ChPV-R(序列表的序列3):GGGTTGGTTAAATGGCAAAG。
實(shí)施例2、半巢式PCR反應(yīng)條件優(yōu)化
1、提取雞細(xì)小病毒的基因組DNA。
2、取步驟1得到的基因組DNA作為模板,采用實(shí)施例1制備的引物組合進(jìn)行半巢式PCR。
(1)以步驟1得到的基因組DNA作為模板,采用引物ChPV-F1和引物ChPV-R進(jìn)行第一輪PCR擴(kuò)增:
第一輪PCR的反應(yīng)體系(25.0μL):2×PCR Mix 12.5μL,模板1μL(DNA含量為5.62ng),ChPV-F1和ChPV-R各1μL,最后用ddH2O補(bǔ)足至25.0μL。第一輪PCR反應(yīng)體系中,ChPV-F1和ChPV-R的濃度均為10pmol/μL。
第一輪PCR的反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
分別設(shè)置如下退火溫度:
退火溫度I:52.0℃;
退火溫度II:52.8℃;
退火溫度III:54.3℃;
退火溫度IV:56.6℃;
退火溫度V:59.3℃;
退火溫度VI:61.6℃;
退火溫度VII:63.1℃;
退火溫度VIII:64.0℃。
將第一輪PCR的擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行1.2%瓊脂糖凝膠電泳并拍照。
根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,確定第一輪PCR的最佳退火溫度為56.6℃。
(2)將步驟(1)退火溫度為56.6℃的第一輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用ddH2O稀釋100倍。
(3)以步驟(2)的稀釋液作為模板,采用引物ChPV-F2和引物ChPV-R進(jìn)行第二輪PCR擴(kuò)增:
第二輪PCR的反應(yīng)體系(25.0μL):2×PCR Mix 12.5μL,模板1μL,ChPV-F2和ChPV-R各1μL,最后用ddH2O補(bǔ)足至25.0μL。第二輪PCR反應(yīng)體系中,ChPV-F2和ChPV-R的濃度均為10pmol/μL。
第二輪PCR的反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
分別設(shè)置如下退火溫度:
退火溫度I:52.0℃;
退火溫度II:52.8℃;
退火溫度III:54.3℃;
退火溫度IV:56.6℃;
退火溫度V:59.3℃;
退火溫度VI:61.6℃;
退火溫度VII:63.1℃;
退火溫度VIII:64.0℃。
將半巢式PCR的擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行1.2%瓊脂糖凝膠電泳并拍照。
第二輪PCR擴(kuò)增結(jié)果見圖1。圖1中,泳道1-8依次對(duì)應(yīng)退火溫度I-VIII時(shí)得到的PCR的擴(kuò)增產(chǎn)物,M對(duì)應(yīng)100bp DNA Marker。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,確定第二輪PCR最佳退火溫度為54.3℃。
根據(jù)以上結(jié)果,確定半巢式PCR的最佳反應(yīng)程序?yàn)椋?/p>
第一輪:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,56.6℃退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
第二輪:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,54.3℃退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
實(shí)施例3、特異性
1、提取待測(cè)樣本的基因組DNA。待測(cè)樣本分別為:雞細(xì)小病毒(ChPV)、馬立克病毒(MDV)、傳染性喉氣管炎病毒(ILTV)。
2、提取待測(cè)樣本的總RNA,并反轉(zhuǎn)錄成cDNA。待測(cè)樣本分別為:雞新城疫病毒(NDV)、H9亞型禽流感病毒(AIV H9)、傳染性支氣管炎病毒(IBV)。
3、分別將步驟1得到的各個(gè)基因組DNA樣本、步驟2得到的各個(gè)eDNA樣本作為模板,采用實(shí)施例1制備的引物組合進(jìn)行半巢式PCR。
(1)以步驟1得到的各個(gè)基因組DNA樣本、步驟2得到的各個(gè)eDNA樣本作為模板,采用引物ChPV-F1和引物ChPV-R進(jìn)行第一輪PCR擴(kuò)增:
第一輪PCR的反應(yīng)體系(25.0μL):2×PCR Mix 12.5μL,模板1μL(DNA或cDNA的含量為5.62ng),ChPV-F1和ChPV-R各1μL,最后用ddH2O補(bǔ)足至25.0μL。第一輪PCR反應(yīng)體系中,ChPV-F1和ChPV-R的濃度均為10pmol/μL。設(shè)置用等體積水作為模板的陰性對(duì)照。
第一輪PCR的反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,56.6℃退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
(2)將步驟(1)的第一輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用ddH2O稀釋100倍。
(3)以步驟(2)的稀釋液作為模板,采用引物ChPV-F2和引物ChPV-R進(jìn)行第二輪PCR擴(kuò)增:
第二輪PCR的反應(yīng)體系(25.0μL):2×PCR Mix 12.5μL,模板1μL,ChPV-F2和ChPV-R各1μL,最后用ddH2O補(bǔ)足至25.0μL。第二輪PCR反應(yīng)體系中,ChPV-F2和ChPV-R的濃度均為10pmol/μL。
第二輪PCR的反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,54.3℃退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
將半巢式PCR的擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行1.2%瓊脂糖凝膠電泳并拍照。
結(jié)果見圖2。圖2中,1為ChPV基因組DNA的半巢式PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,2為NDV cDNA的半巢式PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,3為MDV基因組DNA的半巢式PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,4為AIV H9eDNA的半巢式PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,5為IBV eDNA的半巢式PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,6為ILTV基因組DNA的半巢式PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,M對(duì)應(yīng)100bp DNA Marker,N對(duì)應(yīng)陰性對(duì)照的半巢式PCR擴(kuò)增產(chǎn)物。結(jié)果表明,ChPV擴(kuò)增出186bp的特異性條帶(經(jīng)測(cè)序,如序列表的序列5所示),而NDV、MDV、AIV H9、IBV、ILTV均無特異性條帶出現(xiàn)。
實(shí)施例4、敏感性
1、提取雞細(xì)小病毒的基因組DNA。
2、用ddH2O 10倍梯度稀釋步驟1得到的基因組DNA溶液,得到各個(gè)稀釋液。
3、取步驟2得到的各個(gè)稀釋液作為模板,采用實(shí)施例1制備的引物組合進(jìn)行半巢式PCR。
(1)以步驟2得到的各個(gè)稀釋液作為模板,采用引物ChPV-F1和引物ChPV-R進(jìn)行第一輪PCR擴(kuò)增:
第一輪PCR的反應(yīng)體系(25.0μL):2×PCR Mix 12.5μL,模板1μL,ChPV-F1和ChPV-R各1μL,最后用ddH2O補(bǔ)足至25.0μL。第一輪PCR反應(yīng)體系中,ChPV-F1和ChPV-R的濃度均為10pmol/μL。設(shè)置用等體積水作為模板的陰性對(duì)照。
由于采用的稀釋液的稀釋度不同,形成如下不同的反應(yīng)體系:
反應(yīng)體系1中,雞細(xì)小病毒DNA的初始含量為5.62ng;
反應(yīng)體系2中,雞細(xì)小病毒DNA的初始含量為562pg;
反應(yīng)體系3中,雞細(xì)小病毒DNA的初始含量為56.2pg;
反應(yīng)體系4中,雞細(xì)小病毒DNA的初始含量為5.62pg;
反應(yīng)體系5中,雞細(xì)小病毒DNA的初始含量為562fg;
反應(yīng)體系6中,雞細(xì)小病毒DNA的初始含量為56.2fg;
反應(yīng)體系7中,雞細(xì)小病毒DNA的初始含量為5.62fg;
反應(yīng)體系8中,雞細(xì)小病毒DNA的初始含量為0.56fg。
第一輪PCR的反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,56.6℃退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
(2)將步驟(1)的第一輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用ddH2O稀釋100倍。
(3)以步驟(2)的稀釋液作為模板,采用引物ChPV-F2和引物ChPV-R進(jìn)行第二輪PCR擴(kuò)增:
第二輪PCR的反應(yīng)體系(25.0μL):2×PCR Mix 12.5μL,模板1μL,ChPV-F2和ChPV-R各1μL,最后用ddH2O補(bǔ)足至25.0μL。第二輪PCR反應(yīng)體系中,ChPV-F2和ChPV-R的濃度均為10pmol/μL。
第二輪PCR的反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,54.3℃退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
將半巢式PCR的擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行1.2%瓊脂糖凝膠電泳并拍照。
結(jié)果見圖3。圖3中,泳道1-8依次對(duì)應(yīng)采用反應(yīng)體系1-8時(shí)半巢式PCR的擴(kuò)增產(chǎn)物,M對(duì)應(yīng)100bp DNA Marker,N對(duì)應(yīng)陰性對(duì)照的半巢式PCR的擴(kuò)增產(chǎn)物。結(jié)果表明,最低能檢測(cè)到5.62fg的ChPV。
實(shí)施例5、臨床樣品檢測(cè)
待測(cè)樣本為:2014年10月-2016年11月采集的48份雞病料(雞喉頭、泄殖腔雙棉拭子)。
1、提取待測(cè)樣本的總DNA。
2、將步驟1得到的總DNA作為模板,采用實(shí)施例1制備的引物組合進(jìn)行半巢式PCR。
(1)以步驟1得到的總DNA作為模板,采用引物ChPV-F1和引物ChPV-R進(jìn)行第一輪PCR擴(kuò)增:
第一輪PCR的反應(yīng)體系(25.0μL):2×PCR Mix 12.5μL,模板1μL(DNA的含量為5.62ng),ChPV-F1和ChPV-R各1μL,最后用ddH2O補(bǔ)足至25.0μL。第一輪PCR反應(yīng)體系中,ChPV-F1和ChPV-R的濃度均為10pmol/μL。
第一輪PCR的反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,56.6℃退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
(2)將步驟(1)的第一輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物用ddH2O稀釋100倍。
(3)以步驟(2)的稀釋液作為模板,采用引物ChPV-F2和引物ChPV-R進(jìn)行第二輪PCR擴(kuò)增:
第二輪PCR的反應(yīng)體系(25.0μL):2×PCR Mix 12.5μL,模板1μL,ChPV-F2和ChPV-R各1μL,最后用ddH2O補(bǔ)足至25.0μL。第二輪PCR反應(yīng)體系中,ChPV-F2和ChPV-R的濃度均為10pmol/μL。
第二輪PCR的反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性3min;94℃變性15s,54.3℃退火30s,共進(jìn)行30個(gè)循環(huán),68℃延伸10min。
部分檢測(cè)結(jié)果見圖4。圖4中,M對(duì)應(yīng)100bp DNA Marker,泳道1-24依次對(duì)應(yīng)48份雞病料中24份的檢測(cè)結(jié)果(泳道1、7、9、16、17和19顯示ChPV陽(yáng)性結(jié)果)。48份雞病料中共檢出8份ChPV陽(yáng)性病料。五次重復(fù)檢測(cè),結(jié)果一致。將顯示ChPV陽(yáng)性結(jié)果的泳道中的特異條帶回收并測(cè)序,其測(cè)序結(jié)果與序列5的同源性高達(dá)97%。
<110> 廣西壯族自治區(qū)獸醫(yī)研究所
<120> 鑒定雞細(xì)小病毒的特異引物組合及其應(yīng)用
<130> GNCYXMN162087
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<212> DNA
<213> 人工序列
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<212> DNA
<213> 雞細(xì)小病毒
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<212> DNA
<213> 雞細(xì)小病毒
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