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      一種誘導PC?12細胞分化為神經(jīng)元的方法與流程

      文檔序號:11400595閱讀:889來源:國知局
      一種誘導PC?12細胞分化為神經(jīng)元的方法與流程

      本發(fā)明屬于生物醫(yī)藥領(lǐng)域,特別涉及一種誘導pc-12細胞分化為神經(jīng)元的方法。



      背景技術(shù):

      pc-12細胞是腎上腺嗜鉻細胞(chromaffincell)瘤克隆的細胞株,常取自小牛、大鼠、貓、豬等。既可分泌腎上腺素、去甲腎上腺素等兒茶酚胺類激素,又兼具神經(jīng)細胞的特性,如存在多種電壓依賴性的鈉、鉀、鈣離子通道及受體激活通道,嗜鉻細胞被作為分泌機制和膜離子通道研究中的經(jīng)典細胞模型。屬神經(jīng)峭源性,膜上有神經(jīng)生長因子ngf受體,受生理水平ngf誘導后,它們停止分裂,長出神經(jīng)突起,分化為具有交感神經(jīng)元特性的細胞,有神經(jīng)細胞特性,且可傳代培養(yǎng),類型較為單一,細胞特性穩(wěn)定。被國內(nèi)外廣泛用于神經(jīng)系統(tǒng)方面的體外研究。

      pc-12細胞的一個重要特性是,用神經(jīng)生長因子(ngf)處理后,在表型上獲得巨大的的變化和獲得大量的交感神經(jīng)元的屬性特征,并且能夠抑制細胞增殖和促進神經(jīng)突的生長。神經(jīng)生長因子(ngf)通過trka受體的行為來誘導分化。pc-12細胞的分化通常是通過半定量或定量形態(tài)學方法來評估。因此,我們需要解決的問題是如何誘導pc-12細胞分化成為神經(jīng)元,并使神經(jīng)元的功能和更接近真正的神經(jīng)元。l.a.green使細胞生長在25平方毫米的培養(yǎng)皿中,并用含有7.5%(v/v)胎牛血清、7.5%(v/v)馬血清、2mm羥乙基哌嗪乙硫磺酸和44mm碳酸氫鈉的dmem完全培養(yǎng)基培養(yǎng)。按照培養(yǎng)標準保持在37℃、95%濕度和5%(v/v)二氧化碳的條件下培養(yǎng)。johanjaimemedinabenavente用含有10%(v/v)胎牛血清和10%(v/v)馬血清的dmem培養(yǎng)pc-12細胞。pc-12細胞培養(yǎng)在包被了多聚賴氨酸(pll)的氮化硅表面或塑料盤。保持在37℃、5%(v/v)二氧化碳的濕潤條件下培養(yǎng)。細胞形態(tài)分化后換新鮮的培養(yǎng)基培養(yǎng),新鮮培養(yǎng)基中含有50ng/ml神經(jīng)生長因子(ngf),或者不含有胎牛血清和馬血清。每3天換一次培養(yǎng)基,根據(jù)需要添加神經(jīng)生長因子(ngf)。chan-youngjeon用含有10%(v/v)的馬血清、5%(v/v)胎牛血清和抗生素(100單位/毫升的鏈霉素和100單位/毫升的青霉素)(lonza)的rpmi1640完全培養(yǎng)基,在37℃、5%(v/v)二氧化碳的條件下培養(yǎng)pc-12細胞。為了評估pc-12細胞的分化,細胞培養(yǎng)在用iv型膠原蛋白包被的60mm的培養(yǎng)皿中,細胞密度為5×103個細胞/孔,繼續(xù)培養(yǎng)24小時,用含1%(v/v)的馬血清和0.5%(v/v)的胎牛血清的dmem培養(yǎng)基孵育12h。細胞用100ng/mlngf、100ng/mlbfgf、1mmdbcamp和2mg/ml但不含血清的含有抗生素的bsa處理2天。綜上,誘導pc-12細胞成為神經(jīng)元的方法有許多,什么樣的方法可以更好的誘導pc-12細胞成為神經(jīng)元還有待改進。本發(fā)明通過比較不同的誘導pc-12細胞成為神經(jīng)元的方法,旨在尋求一種更適合誘導pc-12細胞成為神經(jīng)元的方法。使嗜鉻細胞的神經(jīng)系統(tǒng)研究體外模型更貼近體內(nèi)神經(jīng)系統(tǒng)狀態(tài),為神經(jīng)系統(tǒng)研究奠定良好的方法學基礎(chǔ)。



      技術(shù)實現(xiàn)要素:

      本發(fā)明的首要目的在于克服現(xiàn)有技術(shù)的缺點與不足,提供一種誘導pc-12細胞分化為神經(jīng)元的方法。該方法可以顯著提高誘導細胞神經(jīng)突長度、形態(tài)更像是神經(jīng)元的感應,和細胞粘附能力更好,誘導細胞增殖緩慢,極大提高了pc-12細胞誘導效率。

      本發(fā)明的另一目的在于提供所述誘導pc-12細胞分化為神經(jīng)元的方法的應用。

      本發(fā)明的目的通過下述技術(shù)方案實現(xiàn):一種誘導pc-12細胞分化為神經(jīng)元的方法,該方法是在pc-12細胞中加入誘導培養(yǎng)基和ngf(神經(jīng)生長因子)進行誘導分化形成神經(jīng)元;

      所述的誘導培養(yǎng)基為opti-mem完全培養(yǎng)基。

      所述的opti-mem完全培養(yǎng)基為通過向opti-mem培養(yǎng)基中添加0.5%(v/v)胎牛血清,或是添加0.5%(v/v)胎牛血清和1%(v/v)馬血清得到的opti-mem完全培養(yǎng)基;優(yōu)選為通過向opti-mem培養(yǎng)基中添加0.5%(v/v)胎牛血清得到的opti-mem完全培養(yǎng)基。

      所述的加入ngf為加入終濃度為25~100ng/ml的ngf;優(yōu)選為加入終濃度為50ng/ml的ngf。

      所述的pc-12細胞優(yōu)選為大鼠腎上腺嗜鉻細胞瘤細胞(pc-12)。

      所述的誘導分化的條件為37℃,5%(v/v)co2條件下培養(yǎng)6~7天。

      所述的誘導培養(yǎng)基隔天更換一次。

      所述的誘導pc-12細胞分化為神經(jīng)元的方法,可將pc-12細胞接種于含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的opti-mem完全培養(yǎng)基中,再添加終濃度為50ng/ml的ngf進行誘導分化,或是將終濃度為50ng/ml的ngf先加入含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的opti-mem完全培養(yǎng)基中,然后再接種pc-12細胞進行誘導分化。

      所述的pc-12細胞的接種密度約為3.0×104個/ml。

      所述的誘導pc-12細胞分化為神經(jīng)元的方法在神經(jīng)生物學和神經(jīng)藥理學研究模型中的應用。

      本發(fā)明相對于現(xiàn)有技術(shù)具有如下的優(yōu)點及效果:

      1、發(fā)明的目的在于更高效的誘導pc-12細胞的分化,同時,改善誘導后的pc-12細胞的神經(jīng)元特征,使其更貼近體內(nèi)神經(jīng)系統(tǒng)中神經(jīng)元的狀態(tài),能更好的模擬各種實驗處理中神經(jīng)元的應答,使體外實驗的實際可行性及真實性得到提高和認可。為pc-12細胞在神經(jīng)系統(tǒng)研究中奠定良好的方法學基礎(chǔ)。

      2、目前誘導pc-12細胞成為神經(jīng)元的方法多種多樣,最常用的是rpmi1640作為基礎(chǔ)培養(yǎng)基來誘導pc-12分化為神經(jīng)元。本發(fā)明采用的是opti-mem作為基礎(chǔ)培養(yǎng)基來誘導pc-12分化為神經(jīng)元。相對于傳統(tǒng)誘導pc-12細胞分化的方法具有如下的優(yōu)點及效果:(1)本發(fā)明提供了opti-mem完全培養(yǎng)基的一種新用途,應用于培養(yǎng)誘導pc-12細胞分化成具有神經(jīng)元特征的細胞;(2)用ngf誘導分化opti-mem完全培養(yǎng)基培養(yǎng)的pc-12細胞,分化后的pc-12細胞的突起長度顯著性增加,且分化率也顯著性提高;(3)用ngf誘導分化opti-mem完全培養(yǎng)基培養(yǎng)的pc-12細胞,分化后的pc-12細胞粘附率、增殖率都顯著性提高;(4)用ngf誘導分化opti-mem完全培養(yǎng)基培養(yǎng)的pc-12細胞,分化后的pc-12細胞中的gap-43和突觸素-1(synapsin-1)的蛋白表達量也顯著性增加。

      3、本發(fā)明采用的是opti-mem完全培養(yǎng)基培養(yǎng)的pc-12細胞,i減血清培養(yǎng)基是emem的改良型,其中使用了hepes(4-羥乙基哌嗪乙磺酸)和2400mg/l的碳酸氫鈉進行緩沖,并添加次黃嘌呤、胸腺嘧啶、丙酮酸鈉、l-谷氨酰胺、微量元素和生長因子,以及減量至1.1mg/l的酚紅。

      附圖說明

      圖1是本發(fā)明中利用opti-mem培養(yǎng)基與傳統(tǒng)培養(yǎng)基誘導pc-12細胞分化的突起長度及分化率的對比圖;其中,圖a為pc-12細胞突起長度的對比圖,圖b為分化率的對比圖,圖c為免疫熒光拍照圖。

      圖2是本發(fā)明中不同濃度ngf對pc-12細胞分化的影響圖;其中,圖a~c為pc-12細胞在不同培養(yǎng)基和不同濃度ngf條件下,在2、4、6天神經(jīng)突起的長度比較圖;圖d為pc-12細胞在不同培養(yǎng)基和不同濃度ngf條件下的形態(tài)學比較圖。

      圖3是本發(fā)明中利用不同培養(yǎng)基誘導分化pc-12細胞,細胞在不同時間點的粘附情況對比圖。

      圖4是本發(fā)明中利用不同培養(yǎng)基誘導分化pc-12細胞,細胞在不同時間點增殖情況對比圖。

      圖5是本發(fā)明中利用westernblot分析gap-43和突觸素-1(synapsin-1)的蛋白表達情況圖;其中,圖a和b為突觸素-1和gap-43的western蛋白表達圖;圖c和d是突觸素-1和gap-43兩種蛋白表達的定量圖。

      具體實施方式

      下面結(jié)合實施例對本發(fā)明作進一步詳細的描述,但本發(fā)明的實施方式不限于此。

      實驗材料:

      胎牛血清(fbs):(invitrogen,gibco,美國);馬血清(hs):(invitrogen,gibco,美國);opti-mem培養(yǎng)基:(invitrogen,gibco,美國);rpmi1640培養(yǎng)基:(invitrogen,gibco,美國);ngf(神經(jīng)生長因子):(中國,武漢海特生物制藥股份有限公司,注射用鼠神經(jīng)生長因子ngf);pc-12細胞(大鼠腎上腺嗜鉻細胞瘤細胞):(中國,中國科學院上海生化與細胞所);基質(zhì)膠(matrigel):美國bd公司。

      實施例1:誘導pc-12分化神經(jīng)元的幾種不同的條件的比較

      用含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)和/或1%(v/v)馬血清(hs)的opti-mem完全培養(yǎng)基,以及含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)和/或1%(v/v)馬血清(hs)的rpmi1640完全培養(yǎng)基培養(yǎng)pc-12細胞(培養(yǎng)皿中接種3ml約3.0*104/ml的pc-12細胞,共計1.0*105個細胞),在37℃,5%(v/v)co2條件下用終濃度為50ng/ml的ngf誘導分化,繼續(xù)培養(yǎng)。量化pc-12細胞的分化情況,我們以七天為一個周期,統(tǒng)計分析細胞的突起長度及分化率(使用分析軟件imageproplus測量突起長度)。

      結(jié)果如圖1所示,突起長度統(tǒng)計結(jié)果顯示,含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的opti-mem完全培養(yǎng)基培養(yǎng)的pc-12細胞在終濃度為50ng/ml的ngf誘導條件下,分化的突起長度及分化率最佳。含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)和1%(v/v)馬血清(hs)的opti-mem完全培養(yǎng)基培養(yǎng)的pc-12細胞在終濃度為50ng/ml的ngf誘導條件下,分化的突起長度及分化率較只含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的opti-mem完全培養(yǎng)基略有下降,但比傳統(tǒng)方法的rpmi1640完全培養(yǎng)基培養(yǎng)的pc-12細胞顯著性提高。

      實施例2:ngf對誘導pc-12細胞分化成神經(jīng)元的影響

      用含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的opti-mem完全培養(yǎng)基及含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的rpmi1640完全培養(yǎng)基作為基礎(chǔ)培養(yǎng)條件,探究不同濃度ngf(終濃度為25ng/ml,50ng/ml,100ng/ml)在不同時間點(培養(yǎng)2天、4天、6天)對pc-12細胞分化的影響;其中,加入等體積的不含ngf的pbs(濃度為0.01m,ph7.4)與不同濃度的ngf作為對比。

      結(jié)果如圖2所示,其中,圖2a~2c為pc-12細胞在opti-mem和1640組在2、4、6天神經(jīng)突起的長度比較;圖d為pc-12細胞在opti-mem+0.5%fbs和1640+0.5%fbs培養(yǎng)條件下,加入25,50和100ng/ml神經(jīng)生長因子的形態(tài)學比較。從圖中可以看出,當ngf的濃度達到50ng/ml,對pc-12細胞分化的突起長度影響不大,即為ngf誘導分化的上限濃度。同時,opti-mem完全培養(yǎng)基的培養(yǎng)結(jié)果較傳統(tǒng)的rpmi1640完全培養(yǎng)基有顯著性的提高。

      實施例3:opti-mem培養(yǎng)基對分化后pc-12細胞粘附的改善

      用含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的opti-mem完全培養(yǎng)基及含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的rpmi1640完全培養(yǎng)基作為基礎(chǔ)培養(yǎng)條件,用終濃度為50ng/mlngf誘導分化pc-12細胞,在下一個時間周期(7天為一個周期)的不同時間點(0.5h,1h,2h,3h,4h,5h,6h)檢測細胞的粘附情況,檢測的方法如下:96孔板中分別加入50μl基質(zhì)膠(matrigel),37℃、5%(v/v)co2孵育1h,pbs沖洗2次后加入1.0*105/ml密度的pc-12細胞懸液100ul,在37℃、5%(v/v)co2培養(yǎng)0.5、1、2、3、4、5、6h。每組有一半孔不用pbs洗,另一半的孔用溫熱(37℃水浴鍋,水浴30分鐘)的pbs洗去未黏附的細胞,然后通過mtt實驗,測各孔的吸光度值(a值),其中,粘附率=黏附細胞a值/全部細胞a值。

      結(jié)果如圖3所示,圖3為pc-12細胞在含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的opti-mem完全培養(yǎng)基培養(yǎng)、終濃度為50ng/ml的ngf誘導條件下以及在含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的1640完全培養(yǎng)基、終濃度為50ng/ml的ngf誘導條件下的培養(yǎng)結(jié)果。從圖中可以看出,opti-mem完全培養(yǎng)基的培養(yǎng)結(jié)果較傳統(tǒng)的rpmi1640完全培養(yǎng)基有顯著性的提高,最高粘附率分別為85%和64%。

      實施例4:opti-mem培養(yǎng)基對分化后pc-12細胞增殖的改善

      用含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的opti-mem完全培養(yǎng)基及含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的rpmi1640完全培養(yǎng)基作為基礎(chǔ)培養(yǎng)條件,用終濃度為50ng/mlngf誘導分化pc-12細胞一個周期(7天為一個周期)。通過mtt實驗來檢測兩種條件下,不同時間點的細胞增殖情況(接種6塊96孔板,起始細胞數(shù)都為8*103~1.0*104/孔,每天測一塊板的細胞數(shù),連續(xù)測6天)。

      mtt結(jié)果如圖4所示,圖4是pc-12細胞在opti-mem+0.5%fbs+50ng/mlngf以及在1640+0.5%fbs+50ng/mlngf培養(yǎng)條件下,pc-12細胞的增值情況的對比。在opti-mem+0.5%fbs+50ng/mlngf培養(yǎng)條件下pc-12細胞增值緩慢,表明在此條件下更多的pc-12細胞向分化方向發(fā)展;而在1640+0.5%fbs+50ng/mlngf培養(yǎng)條件下,細胞增值更快,表明更多的pc-12細胞向增值方向發(fā)展。結(jié)果說明了opti-mem完全培養(yǎng)基的培養(yǎng)結(jié)果較傳統(tǒng)的rpmi1640完全培養(yǎng)基有顯著性的提高。

      實施例5:opti-mem培養(yǎng)基改善分化后pc-12細胞中神經(jīng)元相關(guān)蛋白表達

      用含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的opti-mem完全培養(yǎng)基及含0.5%(v/v)胎牛血清(fbs)的rpmi1640完全培養(yǎng)基作為基礎(chǔ)培養(yǎng)條件,用終濃度為50ng/mlngf誘導分化pc-12細胞一個周期(7天為一個周期)。培養(yǎng)高密度(6孔板中,每孔8.0*104個細胞)的pc-12細胞以得到足夠分析的蛋白含量。通過westernblot分析gap-43(軸突膜蛋白)和突觸素-1(synapsin-1)的蛋白表達量。

      結(jié)果如圖5所示,westernblot分析結(jié)果顯示,較傳統(tǒng)的rpmi1640完全培養(yǎng)基的培養(yǎng)條件下,opti-mem完全培養(yǎng)基的培養(yǎng)條件下gap-43和突觸素-1的蛋白表達量均有顯著性的提高(圖5a和5b)。且在未經(jīng)ngf誘導分化的pc-12細胞中g(shù)ap-43的蛋白表達水平極低,ngf誘導分化后的2,4,6天gap-43的蛋白表達水平顯著性上升(圖5d)。同樣的,突觸素-1的表達水平在ngf誘導分化后的2,4,6天也顯著性提高(圖5c)。

      上述實施例為本發(fā)明較佳的實施方式,但本發(fā)明的實施方式并不受上述實施例的限制,其他的任何未背離本發(fā)明的精神實質(zhì)與原理下所作的改變、修飾、替代、組合、簡化,均應為等效的置換方式,都包含在本發(fā)明的保護范圍之內(nèi)。

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