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      一種肽用于調(diào)控奶牛瘤胃發(fā)酵的體外應(yīng)用及檢測方法

      文檔序號:6028679閱讀:679來源:國知局
      專利名稱:一種肽用于調(diào)控奶牛瘤胃發(fā)酵的體外應(yīng)用及檢測方法
      技術(shù)領(lǐng)域
      本發(fā)明屬于農(nóng)業(yè)畜牧獸醫(yī)應(yīng)用領(lǐng)域,具體涉及一種調(diào)控奶牛瘤胃發(fā)酵的體外技術(shù)。
      (二)
      背景技術(shù)
      近年來,人們研究發(fā)現(xiàn)由蛋白酶解所產(chǎn)生的小肽片段除了具有營養(yǎng)作用以外,還具有一 些特殊的生理作用。在動物生產(chǎn)中不僅能保持動物肌體的健康,更能夠提高畜產(chǎn)品質(zhì)量。但 是對于肽在奶牛瘤胃內(nèi)的作用機理尚不明確。
      (三)

      發(fā)明內(nèi)容
      本發(fā)明的目的在于提供一種使用的方法快速,可重復(fù),易操作,數(shù)值準確,模擬逼真性 強等特點的肽用于調(diào)控奶牛瘤胃發(fā)酵的體外應(yīng)用及檢測方法。
      本發(fā)明的目的是這樣實現(xiàn)的它包括以下步驟
      (1) 人工瘤胃模擬裝置用內(nèi)徑為32mm,長200mm,刻度體積為100ml的醫(yī)用注射 器作為發(fā)酵器,用可以精確控溫±0.5'C的水浴搖床作為控溫裝置;
      (2) 人工瘤胃緩沖液的配制取得瘤胃液以后加入混合培養(yǎng)液400ml蒸餾水+0.1ml 微量元素溶液+200ml緩沖溶液+200ml常量元素溶液+lml刃天青溶液+40ml還原劑溶液,并 混勻,加熱至39'C,同時使用C02飽和;其中微量元素溶液CaCl2*2H20 13.2g、 MnCl2'4H20 10.0g、CoCl2*6H2O 1.0g、FeCl3*6H2O 8.0g、蒸餾水至100ml;緩沖溶液NH4HC03 4.0g、NaHCO3 35g、蒸餾水至1000ml;常量元素Na2HP04—5.7g、 KH2P04~6.2g、 MgS04*7H20 0.6g、蒸 餾水至1000ml;刃天青溶液0.1% (w/v);還原劑溶液NaOH4.0ml、 Na2S'9H20 625.0mg、 蒸餾水95ml;每個注射器吸入瘤胃液與緩沖液1:2混合液共30ml;
      (3) 在瘤胃微生物培養(yǎng)液發(fā)酵管中添加肽,各處理組均按氨基氮淀粉為1: 4.5的比 例添加玉米淀粉作為微生物生長能源,每個處理組設(shè)發(fā)酵2h、 4h、 6h、 8h、 12h、 24h、 48h 共七個時間點用于采樣,每個時間點設(shè)三個重復(fù),每個重復(fù)一支發(fā)酵管;在各時間點測定發(fā) 酵管內(nèi)發(fā)酵液的產(chǎn)氣量、pH值、氨氮濃度、VFA濃度和MCP的產(chǎn)量;
      (4) 人工瘤胃液的采集在試驗?zāi)膛3匡?h后,分別從每頭牛瘤胃中抽取300ml瘤胃 液,混合,用4層精細紗布過濾,灌入到預(yù)熱達39'C并始終通有C02的保溫瓶中;
      (5) 體外產(chǎn)氣量的測定每個注射器吸入瘤胃液與培養(yǎng)液的混合液后用自制的堵頭密封 保持厭氧,記錄活塞的位置;注射器在39'C水浴,在48小時內(nèi)讀取活塞位置,計數(shù)點為2h、 4h、 6h、 8h、 24h、 48h。用計數(shù)點活塞位置減去活塞的初始位置,即為在相應(yīng)時間內(nèi)飼料發(fā) 酵的產(chǎn)氣量;(6) 瘤胃發(fā)酵液pH值的測定發(fā)酵物樣品被采集后,采用SartoriusPB-20型酸度計對 發(fā)酵物樣品進行pH值測定;
      (7) 瘤胃發(fā)酵液氨氮濃度的測定采用試劑均為分析純,所ffl水為蒸餾水或去離子水; 試劑包括A液苯酚顯色劑(1L)
      1) 稱取0.05g亞硝基鐵氰化鈉(Na2Fe(CN)sNO2H20)溶解于0.5L蒸餾水中;
      2) 稱取10g千燥苯酚(C6H5OH),移入上述1L的容量瓶中,用蒸餾水定容至1L;
      3) 將上述2L的溶液小心移入棕色瓶內(nèi),在2 1(TC下避光保存,保質(zhì)期6個月; B液次氯酸鹽試劑(1L)
      l"g氫氧化鈉(NaOH)溶于燒杯中,加入600ml蒸餾水;
      2) 37.85g磷酸氫二鈉(Na2HP04,7H20)適當加熱溶解搖勻;
      3) 冷卻后,加100ml次氯酸鈉(含氯5.25%)混勻;
      4) 蒸餾水定容至1L;
      5) 1#濾紙過濾后,在2 10'C下,避光保存于聚乙烯瓶中,保質(zhì)期6個月;
      氨標準溶液
      1) 貯備液為32mg/dl;
      2) 1.0045gNH4Cl溶于800ml去氨蒸餾水中;
      3) 用稀釋的鹽酸滴定至pH值為2;
      4) 蒸餾水定容至1L;
      5) 用貯備液配制以下溶液32, 16, 8, 4, 2, 1, Omg/dl標準溶液;
      (8) 瘤胃液樣品采集
      1) 用兩層精細紗布過濾瘤胃液。
      2) 加入2ml新配制的25。/。偏磷酸于8ml兩層紗布過濾的瘤胃液中,封蓋,搖勻。
      3) 若不立即測定在-2(TC保存。
      4) 分析前在ll~12,000rpm下離心20min,上清液用于分析。
      測定步驟
      1) 漩渦振蕩上清液;
      2) 用"Digiflex"自動進樣器,吸取40nl瘤胃液或標準液加40nl蒸餾水至貼好標簽的試管中, 同時設(shè)重復(fù);
      3) 吸取A液2.5ml加入每個試管,漩渦振蕩;
      4) 吸取B液2.0ml加入每個試管,漩渦振蕩;
      5) 在37'C水浴中加熱30min;6) 550nm下讀數(shù)(波長為500~660nm);若顯色太重,用較小的波長測定,或?qū)悠酚谜麴s 水1:1稀釋;
      7) 用線性回歸估測標準曲線;
      8) 吸收值代入方程,對于瘤胃液NH3-N,計算結(jié)果*1.25校正偏磷酸誤差;
      (9) 瘤胃發(fā)酵液VFA濃度的測定試驗中所用試劑均為分析純,所用水為蒸餾水或去 離子水;
      島津GC-2010型氣相色譜儀,氣相色譜條件柱箱溫度120'C、色譜柱為長30m,內(nèi)徑 0.22mm,薄膜厚度0.25nm的中極性毛細管柱、SPL23(TC、壓力97.7kPa、氫氣流量40ml/min、 空氣流量400 ml/min、 FID240'C;采用外標法,配制一系列巳知濃度的色譜標準酸。樣品注 入量為lnl,即將乙酸400nl,丙酸400^1和丁酸200^1用超純水定容至100ml,然后用氣相色 譜儀繪制色譜圖,計算各酸的保留時間和峰面積,按單點法將樣品測定結(jié)果-峰面積值換算成 各揮發(fā)性脂肪酸的摩爾濃度(mmol/L);
      樣品處理取四層紗布過濾的瘤胃液5mL, 10000g離心10min;移取上清液lmL至小離 心管中,并加入冰后的25。/。的偏磷酸0.25mL,靜置30min;然后10000g離心15min,取上清 液直接進行測定;
      (10) 瘤胃發(fā)酵液中微生物蛋白MCP的測定量取50mL經(jīng)4層紗布過濾的瘤胃液,于 39。C下150g離心5min;準確量取30mL上清液于4。C下20000g離心20min,沉淀加入30mL 蒸餾水輕輕搖動溶解后于4'C下20000g離心20min,沉淀經(jīng)生理鹽水和蒸餾水沖洗后再重復(fù) 加入蒸餾水離心一次,以充分消除詞料氮源后,收集細菌沉淀備用,將上述高速離心收集的 細菌沉淀小心無損地轉(zhuǎn)移到消化管中,按凱氏微量定氮法常規(guī)測定。
      本發(fā)明的技術(shù)特點有
      1. 使用的方法快速,可重復(fù),易操作。
      2. 可準確測定肽對瘤胃發(fā)酵參數(shù)的影響產(chǎn)氣量、pH值、氨態(tài)氮值、揮發(fā)性脂肪酸和 MCP指標是瘤胃發(fā)酵的重要指標,對他們的測定可以直接了解活體瘤胃內(nèi)發(fā)酵的具體情況。
      3. 可準確測定肽對瘤胃內(nèi)微生物酶活性的影響淀粉酶、蛋白水解酶和羧申基纖維素 酶活性是瘤胃內(nèi)主要的酶活指標,對他們的測定可以直接了解活體瘤胃內(nèi)微生物的變化情況。
      本發(fā)明是一種研究肽對奶牛瘤胃發(fā)酵影響的方法,屬于大農(nóng)業(yè)畜牧獸醫(yī)領(lǐng)域,本發(fā)明方 法具有方便易學(xué),操作簡便,重復(fù)性高,數(shù)值準確,模擬逼真性強的特點。通過測定產(chǎn)氣、 pH、氨態(tài)氮、揮發(fā)性脂肪酸、瘤胃微生物蛋白及瘤胃內(nèi)典型的三種酶活性,能有效地確定奶 牛瘤胃內(nèi)肽適宜的大致濃度。能夠為今后更深入的理論研究、更準確的配制奶牛日糧、減少 蛋白飼料的浪費,提高奶制品質(zhì)量做出科學(xué)依據(jù)和理論指導(dǎo)。本發(fā)明方法能夠模擬出肽在活體瘤胃內(nèi)對其發(fā)酵影響的實際情況,為本學(xué)科發(fā)明研究提 供了理論基礎(chǔ),利用奶牛作為實驗動物,通過體外發(fā)酵,模擬出肽在活體瘤胃內(nèi)的發(fā)酵情況, 對選定的發(fā)酵參數(shù)與酶活性指標進行測定,直觀了解了肽對活畜瘤胃發(fā)酵的影響,并初步找 到了肽的適宜添加量。
      (四)


      圖1為第一種具休實施方式的預(yù)處理流程示意圖; 圖2為第二種具體實施方式
      的預(yù)處理流程示意圖。
      (五) 具休實施方式
      下面結(jié)合具休實施例對本發(fā)明作進一步的說明 一、實施例l:不同濃度肽對人工瘤胃發(fā)酵參數(shù)的影響
      1、 試驗材料
      (1) 人工瘤胃模擬裝置
      用內(nèi)徑為32mm,長200mm,刻度休積為100ml的醫(yī)用注射器作為發(fā)酵器,用可以精確 控溫的(±0.5°C)的水浴搖床作為控溫裝置。
      (2) 人工瘤胃緩沖液(Menke液)的配制
      緩沖液的配制按照Menke等(1979)的方法進行。取得瘤胃液以后加入混合培養(yǎng)液400ml 蒸餾水+0.1ml微量元素溶液A+200ml緩沖溶液B+200ml常量元素溶液C+lml刃天青溶液 +40011還原劑溶液。并混勻,加熱至39t:,同時使用C02飽和。
      微量元素溶液(A) : CaCl2.2H20-13.2g 、 MnCl2'4H2O-10.0g 、 CoCl2'6H2O-1.0g 、 FeCl3*6H2O-8.0g、蒸餾水至----1、00ml
      緩沖溶液(B) : NH4HCO34.Og、 NaHC03—35g、蒸餾水至----1000ml
      常量元素(C): Na2HP04—5.7g、 KH2P04—6.2g、 MgS04*7H20—"0.6g、蒸餾水至----1000ml
      刃天青溶液0.1% (W/V)
      還原劑溶液NaOH"^.0ml、 Na2S'9H2O~625.0mg、蒸餾水一95ml 每個注射器吸入瘤胃液與緩沖液(1:2)混合液共30ml。
      2、 試驗設(shè)計
      在瘤胃微生物培養(yǎng)液發(fā)酵管中添加肽。各處理組均按氨基氮:淀粉為1:4.5的比例添加玉 米淀粉作為微生物生長能源。每個處理組設(shè)發(fā)酵2h、 4h、 6h、 8h、 12h、 24h、 48h共七個時 間點用于釆樣,每個時間點設(shè)三個重復(fù),每個重復(fù)一支發(fā)酵管。
      在各時間點測定發(fā)酵管內(nèi)發(fā)酵液的產(chǎn)氣量、pH值、氨氮濃度、VFA濃度和MCP的產(chǎn)量。
      3、 人工瘤胃液的采集在試驗?zāi)膛3匡?h后,分別從每頭牛瘤胃中抽取300ml瘤胃液,混合,用4層精細紗布 過濾,灌入到預(yù)熱達39'C并始終通有C02的保溫瓶中,迅速返回實驗室。 4、樣品測定流程與檢測方法,結(jié)合圖1:
      (1) 體外產(chǎn)氣量的測定 每個注射器吸入瘤胃液與培養(yǎng)液的混合液后川自制的堵頭密封保持厭氧,記錄活塞的位
      置。注射器在39'C水浴,在48小時內(nèi)讀取活塞位置,計數(shù)點為2h、 4h、 6h、 8h、 24h、 48h。 用計數(shù)點活塞位置減去活塞的初始位置,即為在相應(yīng)時間內(nèi)飼料發(fā)酵的產(chǎn)氣量。
      (2) 瘤胃發(fā)酵液pH值的測定
      瘤胃液中的C02對瘤胃pH值有很大影響。發(fā)酵物樣品被采集后,應(yīng)立即進行測定。否 則,部分C02被釋放后,可造成瘤胃pH值的測定有較大誤差。采樣后立即用Sartorius PB-20 型酸度計對發(fā)酵物樣品進行pH值測定。
      (3) 瘤胃發(fā)酵液氨氮濃度的測定
      試驗中所用試劑均為分析純,所用水為蒸餾水或去離子水。 試劑
      A液苯酚顯色劑(1L)
      1) 稱取0.05g亞硝基鐵氰化鈉(Na2Fe(CN)5N02H20)溶解于0.5L蒸餾水中。 (此過程應(yīng)戴防護手套)
      2) 小心稱取10g千燥苯酚(C6H5OH),移入上述1L的容量瓶中,用蒸餾水定容至1L。
      3) 將上述2L的溶液小心移入棕色瓶內(nèi),在2-l(TC下避光保存,保質(zhì)期6個月。 B液次氯酸鹽試劑(1L)
      1) 5g氫氧化鈉(NaOH)溶于燒杯中,加入600ml蒸餾水。
      2) 37.85g磷酸氫二鈉(Na2HP(V7H20)適當加熱溶解搖勻。
      3) 冷卻后,加100ml次氯酸鈉(含氯5.25%,確保新鮮)混勻。
      4) 蒸餾水定容至1L。
      5) 1#濾紙過濾后,在2 1(TC下,避光保存于聚乙烯瓶中,保質(zhì)期6個月。 氨標準溶液
      1) IC備液為32mg/dl
      2) 1.0045gNH4Cl溶于800ml去氨蒸餾水中。
      3) 用稀釋的鹽酸滴定至pH值為2。
      4) 蒸餾水定容至1L。
      5) 用貯備液配制以下溶液32, 16, 8, 4, 2, 1, 0mg/dl標準溶液。(4) 瘤胃液樣品采集
      1 )用兩層精細紗布過濾瘤胃液。
      2) 加入2ml新配制的25%偏磷酸于8ml兩層紗布過濾的瘤胃液中,封蓋,搖勻。
      3) 若不立即測定在-2(TC保存。
      4) 分析前在ll~12,000rpm下離心20min,上清液用于分析。 測定步驟
      1) 漩渦振蕩上清液。
      2) 用"Digiflex"自動進樣器,吸取4(^1瘤胃液或標準液加40nl蒸餾水至貼好標簽的試管中, 同時設(shè)重復(fù)。
      3) 吸取A液2.5ml加入每個試管,漩渦振蕩。
      4) 吸取B液2.0ml加入每個試管,漩渦振蕩。
      5) 在37t:水浴中加熱30min。
      6) 550nm下讀數(shù)(波長為500~660nm)。若顯色太重,用較小的波長測定,或?qū)悠酚谜麴s 水1:1稀釋。
      7) 用線性回歸估測標準曲線。
      8) 吸收值代入方程,對于瘤胃液NH3-N,計算結(jié)果*1.25校正偏磷酸誤差。
      (5) 瘤胃發(fā)酵液VFA濃度的測定 試驗中所用試劑均為分析純,所用水為蒸餾水或去離子水。
      島津GC-2010型氣相色譜儀。氣相色譜條件柱箱溫度12(TC、色譜柱為長30m,內(nèi)徑 0.22mm,薄膜厚度0.25nm的中極性毛細管柱、SPL23(TC、壓力97.7kPa、氫氣流量40ml/min、 空氣流量400 ml/min、 FID24(TC。采用外標法,配制一系列已知濃度的色譜標準酸。樣品注 入量為即將乙酸400nl,丙酸400nl和丁酸20(Hil用超純水定容至100ml,然后用氣相色 譜儀繪制色譜圖,計算各酸的保留時間和峰面積,按單點法將樣品測定結(jié)果-峰面積值換算成 各揮發(fā)性脂肪酸的摩爾濃度(mmol/L)。
      樣品處理取四層紗布過濾的瘤胃液5mL, 10000g離心10min;移取上清液lmL至小離 心管中,并加入冰后的25Q/。的偏磷酸0.25mL,靜置30min;然后10000g離心15min,取上清 液直接進行測定。
      (6) 瘤胃發(fā)酵液中微生物蛋白MCP的測定
      按圖中程序,量取50mL經(jīng)4層紗布過濾的瘤胃液,于39'C下150g離心5min;準確量 取30mL上清液于4'C下20000g離心20min,沉淀加入30mL蒸餾水輕輕搖動溶解后于4'C下 20000g離心20min,沉淀經(jīng)生理鹽水和蒸餾水沖洗后再重復(fù)加入蒸餾水離心一次,以充分消除飼料氮源后,收集細菌沉淀備用。將上述高速離心收集的細菌沉淀小心無損地轉(zhuǎn)移到消化 管中,按凱氏微量定氮法常規(guī)測定。 5、統(tǒng)計分析
      各項指標的測定數(shù)據(jù)經(jīng)Excd2003初步整理后,均釆;H SAS統(tǒng)計軟件包中的GLM過程進 行方差分析和顯著性檢驗,多重比較采用Duncan法測驗,利用Means過程計算平均數(shù)及標 準差。
      二、實施例2:不同濃度肽對人工瘤胃酶活的影響
      1、 試驗材料
      同上
      2、 試驗設(shè)計
      同上
      在各時間點測定發(fā)酵管內(nèi)發(fā)酵液中微生物淀粉酶活性、蛋白酶活力和羧甲基纖維素酶的 活力。
      3、 樣品測定流程與檢測方法,結(jié)合圖2.
      根據(jù)瘤胃微生物發(fā)酵的條件和特點,選擇淀粉酶、蛋白酶和羧甲基纖維素酶(以羧甲基纖 維素鈉為底物,主要是內(nèi)切葡萄糖苷酶,B卩endo-l,4-(3-D-glucanase,簡稱EG)三個指標按圖2 進行瘤胃微生物酶活性的測定。
      (1) 淀粉酶活性的測定
      采集瘤胃液,離心,取上清液,用淀粉酶試劑盒測定(南京建成)。
      (2) 蛋白酶酶活性的測定
      試驗中所用試劑均為分析純,所用水為蒸餾水或去離子水。 試劑
      1%酪蛋白底物l.Og酪蛋白溶于100ml0.01mol/LNaOH。 0.01mol/LNaOH: 0.4gNaOH用蒸餾水定容至1000ml容量瓶中。 10%三氯乙酸10g三氯乙酸溶于100ml蒸餾水中。 0.4mol/LNa2CO3: 42 預(yù)處理流程 二 1000ml容量瓶中。
      0.5mol/LHCl:量取4 Pretreatment Process d蒸餾水中。 酪氨酸儲備液O.lg干燥L(fēng)-酪氨酸用0.5mol/L HC1定容至100ml。 測定方法
      以lmll。/。的酪蛋白為底物,加入4ml瘤胃液,在38'C條件下厭氧培養(yǎng)4小時,然后加入 5mL10。/。三氯乙酸除去未分解的酪蛋白,以4000rpm離心15分鐘,取上清lml,分別加入5ml0.4mol/L Na2C03溶液和1ml Folin-phenol(酚)試劑,混合后顯色15分鐘,在680nm處測定吸 光度。依標準曲線計算酪氨酸生成量。每分鐘催化酪蛋白水解生成lug酪氨酸的酶量定義為 一個酶活單位。
      取酪氨酸儲備液O、 2、 4、 6、 8、 10ml,用水稀釋至10ml。按同樣操作方法,測定標準 曲線。
      (3) 羧甲基纖維素酶酶活性的測定
      試驗中所用試劑均為分析純,所用水為蒸餾水或去離子水。 試劑
      0.2M磷酸緩沖液(pH6.0):
      分別稱取71.64g十二水磷酸氫二鈉(Na2HPCV12H20)和31.21g 二水磷酸二氫鈉 (NaH2P04*2H20),各自溶解于1000ml蒸餾水配成0.2M的貯存液,121'C滅菌15min保存; 量取磷酸氫二鈉溶液12.3ml和磷酸二氫鈉溶液87.7ml,混合均勻,配制成100ml , pH6.0的
      磷酸緩沖液。
      0.5y。羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)底物溶液
      稱取0.5g羧甲基纖維素鈉用50mM, pH6. 0磷酸緩沖液定容至lOOml。 DNS溶液
      甲液(6.9g結(jié)晶酚溶于15.2mll0。/。氫氧化鈉溶液,蒸餾水稀釋至69ml,加6.9g亞硫酸鈉) 與乙液(255g酒石酸鉀鈉溶于300mll0。/。氫氧化鈉溶液中,再加入880mll% 3, 5 —二硝基水楊 酸溶液)混合呈黃棕色,棕色試劑瓶中放置7 10天后使用。 葡萄糖標準溶液
      稱取lg分析純的葡萄糖溶于小燒杯中,完全轉(zhuǎn)移到1L容量瓶中,定容,此時葡萄糖濃 度為1.0mg/ml,為母液;用移液管移取O、 10、 20、 30、 40、 50、 60 ml母液到100ml容量瓶 中,定容,制成每升溶液中分別含葡萄糖O、 100、 200、 300、 400、 500、 600mg的標準溶液。
      (4) 標準曲線的繪制
      取1ml系列濃度的葡萄糖溶液加到15ml刻度試管中,加入2mlDNS溶液,沸水浴lOmin 后迅速流水沖洗冷卻,用蒸餾水定容至15ml,以O(shè).Omg/kg為空白,550nm下測定吸光度;以 吸光度為橫坐標、葡萄糖濃度為縱坐標作標準曲線,并得出回歸方程。 纖維素酶活力測定方法
      以羧甲基纖維素鈉溶液為底物,酶活單位(IU)定義為每min每ml酶液作用于底物生 成的葡萄糖的量(nmol)。取lml底物溶液加到15ml刻度試管中,5(TC水浴中振蕩30min, 加入0.2ml處理后的酶液,50'C水浴中振蕩反應(yīng)60min,迅速取出并加入2mlDNS溶液終止反應(yīng),沸水浴10min后迅速流水沖洗冷卻,用蒸餾水定容至15ml,搖勻,部分轉(zhuǎn)移至10ml的
      離心管中,在3.2x103 rpm下離心15min, 550nm下測定吸光度??瞻讟又谱飨祵?.2ml處理
      后的酶液換成0.2ml50mM, pH6.0磷酸緩沖液,其余不變。
      酶活(IU) =[ (Cmg/Lxl5ml) /葡萄糖分子量]/ (60minx0.2ml酶液)
      4、統(tǒng)計分析
      各項指標的測定數(shù)據(jù)經(jīng)Excel2003整理后,采用SAS統(tǒng)計軟件包中的GLM過程進行方 差分析和顯著性檢驗,多重比較采用Duncan法測驗,利用Means過程計算平均數(shù)及標準差。 三、試驗效果
      瘤胃pH值總的變化趨勢是發(fā)酵后各組pH值先降低后升高,且均處在正常范圍之內(nèi),差 異不顯著;發(fā)酵液的氨氮濃度值隨時間變化的趨勢是,在發(fā)酵的24h內(nèi),各組氨氮濃度值先 升高,再降低;各處理組在24h的發(fā)酵過程中,微生物蛋白>量呈現(xiàn)降-升-降-升的動態(tài)變化 趨勢,且10g/L組、20g/L組變化相近。綜合各指標,人工瘤胃內(nèi)適宜的肽濃度在15~20g/L。
      通過試驗結(jié)果分析,可以看出,該試驗取得了良好的效果,達到了預(yù)期目的。不僅能在 相對簡單的條件下順利完成試驗,而且試驗成本低,環(huán)境污染程度小。
      權(quán)利要求
      1、一種肽用于調(diào)控奶牛瘤胃發(fā)酵的體外應(yīng)用及檢測方法,其特征在于它包括以下步驟(1)人工瘤胃模擬裝置用內(nèi)徑為32mm,長200mm,刻度體積為100ml的醫(yī)用注射器作為發(fā)酵器,用可以精確控溫±0.5℃的水浴搖床作為控溫裝置;(2)人工瘤胃緩沖液的配制取得瘤胃液以后加入混合培養(yǎng)液400ml蒸餾水+0.1ml微量元素溶液+200ml緩沖溶液+200ml常量元素溶液+1ml刃天青溶液+40ml還原劑溶液,并混勻,加熱至39℃,同時使用CO2飽和;其中微量元素溶液CaCl2·2H2O 13.2g、MnCl2·4H2O10.0g、CoCl2·6H2O 1.0g、FeCl3·6H2O 8.0g、蒸餾水至100ml;緩沖溶液NH4HCO3 4.0g、NaHCO335g、蒸餾水至1000ml;常量元素Na2HPO4—5.7g、KH2PO4—6.2g、MgSO4·7H2O 0.6g、蒸餾水至1000ml;刃天青溶液0.1%(w/v);還原劑溶液NaOH 4.0ml、Na2S·9H2O 625.0mg、蒸餾水95ml;每個注射器吸入瘤胃液與緩沖液1:2混合液共30ml;(3)在瘤胃微生物培養(yǎng)液發(fā)酵管中添加肽,各處理組均按氨基氮淀粉為14.5的比例添加玉米淀粉作為微生物生長能源,每個處理組設(shè)發(fā)酵2h、4h、6h、8h、12h、24h、48h共七個時間點用于采樣,每個時間點設(shè)三個重復(fù),每個重復(fù)一支發(fā)酵管;在各時間點測定發(fā)酵管內(nèi)發(fā)酵液的產(chǎn)氣量、pH值、氨氮濃度、VFA濃度和MCP的產(chǎn)量;(4)人工瘤胃液的采集在試驗?zāi)膛3匡?h后,分別從每頭牛瘤胃中抽取300ml瘤胃液,混合,用4層精細紗布過濾,灌入到預(yù)熱達39℃并始終通有CO2的保溫瓶中;(5)體外產(chǎn)氣量的測定每個注射器吸入瘤胃液與培養(yǎng)液的混合液后用自制的堵頭密封保持厭氧,記錄活塞的位置;注射器在39℃水浴,在48小時內(nèi)讀取活塞位置,計數(shù)點為2h、4h、6h、8h、24h、48h。用計數(shù)點活塞位置減去活塞的初始位置,即為在相應(yīng)時間內(nèi)飼料發(fā)酵的產(chǎn)氣量;(6)瘤胃發(fā)酵液pH值的測定發(fā)酵物樣品被采集后,采用Sartorius PB-20型酸度計對發(fā)酵物樣品進行pH值測定;(7)瘤胃發(fā)酵液氨氮濃度的測定采用試劑均為分析純,所用水為蒸餾水或去離子水;試劑包括A液苯酚顯色劑(1L)1)稱取0. 05g亞硝基鐵氰化鈉(Na2Fe(CN)5NO·2H2O)溶解于0.5L蒸餾水中;2)稱取10g干燥苯酚(C6H5OH),移入上述1L的容量瓶中,用蒸餾水定容至1L;3)將上述2L的溶液小心移入棕色瓶內(nèi),在2~10℃下避光保存,保質(zhì)期6個月;B液次氯酸鹽試劑(1L)1)5g氫氧化鈉(NaOH)溶于燒杯中,加入600ml蒸餾水;2)37. 85g磷酸氫二鈉(Na2HPO4·7H2O)適當加熱溶解搖勻;3)冷卻后,加100ml次氯酸鈉(含氯5.25%)混勻;4)蒸餾水定容至1L;5)1#濾紙過濾后,在2~10℃下,避光保存于聚乙烯瓶中,保質(zhì)期6個月;氨標準溶液1)貯備液為32mg/dl;2)1. 0045g NH4Cl溶于800ml去氨蒸餾水中;3)用稀釋的鹽酸滴定至pH值為2;4)蒸餾水定容至1L;5)用貯備液配制以下溶液32,16,8,4,2,1,0mg/dl標準溶液;(8)瘤胃液樣品采集1)用兩層精細紗布過濾瘤胃液。2)加入2ml新配制的25%偏磷酸于8ml兩層紗布過濾的瘤胃液中,封蓋,搖勻。3)若不立即測定在-20℃保存。4)分析前在11~12,000rpm下離心20min,上清液用于分析。測定步驟1)漩渦振蕩上清液;2)用“Digiflex”自動進樣器,吸取40μl瘤胃液或標準液加40μl蒸餾水至貼好標簽的試管中,同時設(shè)重復(fù);3)吸取A液2. 5ml加入每個試管,漩渦振蕩;4)吸取B液2. 0ml加入每個試管,漩渦振蕩;5)在37℃水浴中加熱30min;6)550nm下讀數(shù)(波長為500~660nm);若顯色太重,用較小的波長測定,或?qū)悠酚谜麴s水1:1稀釋;7)用線性回歸估測標準曲線;8)吸收值代入方程,對于瘤胃液NH3-N,計算結(jié)果*1.25校正偏磷酸誤差;(9)瘤胃發(fā)酵液VFA濃度的測定試驗中所用試劑均為分析純,所用水為蒸餾水或去離子水;島津GC-2010型氣相色譜儀,氣相色譜條件柱箱溫度120℃、色譜柱為長30m,內(nèi)徑0.22mm,薄膜厚度0.25μm的中極性毛細管柱、SPL230℃、壓力97.7kPa、氫氣流量40ml/min、空氣流量400ml/min、FID240℃;采用外標法,配制一系列已知濃度的色譜標準酸。樣品注入量為1μl,即將乙酸400μl,丙酸400μl和丁酸200μl用超純水定容至100ml,然后用氣相色譜儀繪制色譜圖,計算各酸的保留時間和峰面積,按單點法將樣品測定結(jié)果-峰面積值換算成各揮發(fā)性脂肪酸的摩爾濃度(mmol/L);樣品處理取四層紗布過濾的瘤胃液5mL,10000g離心10min;移取上清液1mL至小離心管中,并加入冰后的25%的偏磷酸0.25mL,靜置30min;然后10000g離心15min,取上清液直接進行測定;(10)瘤胃發(fā)酵液中微生物蛋白MCP的測定量取50mL經(jīng)4層紗布過濾的瘤胃液,于39℃下150g離心5min;準確量取30mL上清液于4℃下20000g離心20min,沉淀加入30mL蒸餾水輕輕搖動溶解后于4℃下20000g離心20min,沉淀經(jīng)生理鹽水和蒸餾水沖洗后再重復(fù)加入蒸餾水離心一次,以充分消除飼料氮源后,收集細菌沉淀備用,將上述高速離心收集的細菌沉淀小心無損地轉(zhuǎn)移到消化管中,按凱氏微量定氮法常規(guī)測定。
      全文摘要
      本發(fā)明提供了一種肽用于調(diào)控奶牛瘤胃發(fā)酵的體外應(yīng)用及檢測方法,可準確測定肽對瘤胃發(fā)酵參數(shù)的影響產(chǎn)氣量、pH值、氨態(tài)氮值、揮發(fā)性脂肪酸和MCP指標是瘤胃發(fā)酵的重要指標,對他們的測定可以直接了解活體瘤胃內(nèi)發(fā)酵的具體情況,還可準確測定肽對瘤胃內(nèi)微生物酶活性的影響淀粉酶、蛋白水解酶和羧甲基纖維素酶活性是瘤胃內(nèi)主要的酶活指標,對他們的測定可以直接了解活體瘤胃內(nèi)微生物的變化情況。本發(fā)明方法具有方便易學(xué),操作簡便,重復(fù)性高,數(shù)值準確,模擬逼真性強的特點,能有效地確定奶牛瘤胃內(nèi)肽適宜的大致濃度。能夠為今后更深入的理論研究、更準確的配制奶牛日糧、減少蛋白飼料的浪費,提高奶制品質(zhì)量做出科學(xué)依據(jù)和理論指導(dǎo)。
      文檔編號G01N7/20GK101413940SQ20081020961
      公開日2009年4月22日 申請日期2008年12月4日 優(yōu)先權(quán)日2008年12月4日
      發(fā)明者單安山, 寧 馬, 馬清泉 申請人:東北農(nóng)業(yè)大學(xué)
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