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      用于甜瓜枯萎病抗性鑒定的功能性分子標(biāo)記一及其用途的制作方法

      文檔序號:400195閱讀:207來源:國知局
      專利名稱:用于甜瓜枯萎病抗性鑒定的功能性分子標(biāo)記一及其用途的制作方法
      技術(shù)領(lǐng)域
      本發(fā)明屬于蔬菜抗病分子標(biāo)記育種技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種甜瓜枯萎病抗性基因 Fom-2功能性分子標(biāo)記及其應(yīng)用,從而為甜瓜枯萎病抗性的標(biāo)記輔助選擇提供一種新型分子標(biāo)記。
      背景技術(shù)
      甜瓜(Cocumis melo L.)作為葫蘆科(Cucurbitaceae)植物中一種重要的園藝作物,具有較高的商業(yè)品價值和經(jīng)濟(jì)價值,是我國重要的經(jīng)濟(jì)作物之一。近年來隨著甜瓜種質(zhì)資源商品化和種植面積的不斷擴大,病蟲害發(fā)生日益嚴(yán)重,迫使生產(chǎn)上大量使用化學(xué)試劑,嚴(yán)重影響了甜瓜的產(chǎn)量和品質(zhì)(Sherf and MacNab 1986)。其中甜瓜枯萎病是由尖孢鐮刀菌導(dǎo)致的一種世界范圍內(nèi)毀滅性的土傳病害,導(dǎo)致甜瓜90%以上的經(jīng)濟(jì)損失 (Leach JG1938 ;Martyn RD 1987)。目前已經(jīng)鑒定分離得到4種枯萎病菌生理小種,分別為生理小種0,1,2和1-2。遺傳分析表明,2個獨立的基因Fom-I和Fom-2分別控制對生理小種 0,2 和 0,1 的抗性(Risser et al. 1976 ;Risser and Mas 1965 ;Robinson et al. 1976)。其中!^0111-2基因已經(jīng)通過圖位克隆的方法得到分離(Joobeur et al. 2004)。 Fom-2 基因?qū)儆?NBS-LRR 類的 R 基因,這類基因編碼 NBS (nucleotide binding site, NBS) 和LRRdeucine-rich repeat, LRR)兩個比較保守的結(jié)構(gòu)域。通常植物?;剐允怯捎谒拗鲗剐缘鞍桩a(chǎn)生的無毒基因的識別,進(jìn)而引發(fā)一個信號級聯(lián)反應(yīng)和防御反應(yīng)(Hammond Kosack and Jones 1997 ;Martin et al. 2003)。植物的R基因不斷變化來識別產(chǎn)生變異的無毒基因,這有利于人們在分子水平上發(fā)現(xiàn)和認(rèn)識自然選擇?,F(xiàn)在人們已從許多物種中克隆得到R基因,并驗證了它們在抗性和不抗材料間的功能多樣性。許多研究表明擬南芥和其他幾個物種R基因存在序列的多態(tài)性,這種種間或種內(nèi)影響表型的基因序列多態(tài)性的識別有利于功能性分子標(biāo)記的發(fā)展(Andersen and Lubberstedt,2003)。目前培育優(yōu)良抗枯萎病甜瓜品種成為解決甜瓜枯萎病害問題的有效途徑之一,分子輔助選擇(MAQ手段的發(fā)展能大大縮短甜瓜枯萎病抗性育種進(jìn)程。但目前抗病育種過程中所使用的分子標(biāo)記與目標(biāo)基因存在一定遺傳距離,易發(fā)生重組交換而分離,從而影響選擇的準(zhǔn)確性。功能性分子標(biāo)記是與表型相關(guān)的功能基因基序中功能性單核苷酸多態(tài)性位點開發(fā)而成的新型分子標(biāo)記,功能性分子標(biāo)記的開發(fā)首先需要鑒定出群體中與表型相關(guān)的功能基因的功能性基序的序列。AS-PCR和CAPS方法已成功應(yīng)用于基于SNPs的一系列功能性分子標(biāo)記的開發(fā)(Chiapparino et al. 2004 ;Kim et al. 2006 ;Yeam et al. 2005)。功能性分子標(biāo)記不需要復(fù)雜昂貴的儀器設(shè)備或繁瑣的操作步驟,因此非常適合應(yīng)用于分子育種過程。隨著越來越多的功能基因及其等位基因的分離和注釋,功能性分子標(biāo)記已成為一類新型分子標(biāo)記,可以大大提高標(biāo)記的效率。

      發(fā)明內(nèi)容
      本發(fā)明要解決的技術(shù)問題是提供一種與甜瓜枯萎病抗性基因i^om-2相關(guān)的功能性分子標(biāo)記,其適用于甜瓜的抗枯萎病的輔助選擇。為了解決上述技術(shù)問題,本發(fā)明提供一種用于甜瓜枯萎病抗性鑒定的功能性分子標(biāo)記,該分子標(biāo)記所采用的CAPS引物序列為以下任意一種CAPSl 正向引物為 5,-TGCTCCTTTGGCTTCCTGT-3, (SEQ ID NO 3)反向引物為 5,-GAGTCTATTGTTTCGCTTCA-3, (SEQ ID NO 4),CAPS2 正向引物為 5,-GGAAGTGAGGTGTTGAATT-3, (SEQ ID NO 5)反向引物為 5,-TACACATTGGTCCGTTAGAC-3, (SEQ ID NO 6),CAPS3 正向引物為 5,-AGACGTAGCATTGCTTCTCTAG-3,(SEQ ID NO 7)反向引物為 5,-TGGCATCCTTCAGCACCTTC-3,(SEQ ID NO 8);或者,該分子標(biāo)記所采用的AS-PCR引物序列為AS-PCR 正向引物為 5,-GTGTAACACAAATTCCTCAACA-3, (SEQ ID NO 9)反向引物為 5,-GACGTAGCATTGCTTCTGTAGA-3,(SEQ ID NO :10)。本發(fā)明還同時提供了上述功能性分子標(biāo)記的用途用于甜瓜枯萎病的分子輔助育
      種,或者用于鑒定甜瓜枯萎病抗性基因。發(fā)明人發(fā)現(xiàn)了甜瓜枯萎病抗性基因i^om-2在抗病與感病種質(zhì)的LRR區(qū)域有3個 SNP位點,甜瓜枯萎病抗性基因i^om-2的核苷酸序列如序列表SEQ ID N0:1所述??菸】剐院透胁〔牧显谛蛄斜鞸EQ ID NO 1的^lbp處有一個A-G的堿基突變,在1075bp處有一個A-G的堿基突變,在1216bp處有一個T-C的堿基突變(圖1)。突變后的核苷酸序列如序列表SEQ ID NO 2所述。根據(jù)上述SEQ ID NO 1的序列的SNP特征,分別設(shè)計引物,開發(fā)FMs,所述的CAPS 和AS-PCR方法的引物對分別為CAPSl 正向引物為 5,-TGTTTGGAGAAAGTTGAAAGTC-3,反向引物為 5,-ACCATACAAACCTATCTCTATT-3,;CAPS2 正向引物為 5,-GGAAGTGAGGTGTTGAATT-3,反向引物為 5,-TACACATTGGTCCGTTAGAC-3,;CAPS3 正向引物為 5,-AGACGTAGCATTGCTTCTCTAG-3,反向引物為 5,-TGGCATCCTTCAGCACCTTC-3,。AS-PCR 正向引物為 5,-GTGTAACACAAATTCCTCAACA-3,反向引物為 5,-GACGTAGCATTGCTTCTGTAGA-3,。該CAPS及AS-PCR引物對能成功鑒定出甜瓜抗病及感病種質(zhì)(圖2、3),并且在F2
      世代中呈單基因遺傳分離規(guī)律(表1、2),應(yīng)用上述兩種方法可以成功鑒定出甜瓜種質(zhì)對枯萎病抗性的基因型(表3)。


      下面結(jié)合附圖對本發(fā)明的具體實施方式
      作進(jìn)一步詳細(xì)說明。圖1是本發(fā)明的甜瓜抗病及感病種質(zhì)i^om-2基因LRR區(qū)域SNP位點圖;圖1中fom-2-R代表枯萎病抗病基因型,F(xiàn)om-2-S代表枯萎病感病基因型;圖2是CAPS方法鑒定甜瓜抗病及感病種質(zhì)對比圖;圖2中FF為抗病純合基因型,F(xiàn)f為抗病雜合基因型,ff為感病純合基因型,M為 DNA分子量標(biāo)準(zhǔn);圖3是AS-PCR方法鑒定甜瓜抗病及感病種質(zhì)對比圖;圖3中FF為抗病純合基因型,F(xiàn)f為抗病雜合基因型,ff為感病純合基因型,M為 DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)。
      具體實施例方式實施例1、本發(fā)明的主要步驟和內(nèi)容為根據(jù)數(shù)據(jù)庫中甜瓜枯萎病抗性基因i^m-2 設(shè)計引物,以甜瓜抗病及感病種質(zhì)及它們Fp F2世代基因組DNA為模板,鏈?zhǔn)骄酆厦阜磻?yīng) (PCR)方法擴增目的片段、測序,然后應(yīng)用生物信息學(xué)然間對序列進(jìn)行分析。采用CAPS和 AS-PCR兩種方法開發(fā)枯萎病抗性相關(guān)的FMs,并在F1J2世代驗證其有效性和可靠性。應(yīng)用上述兩種標(biāo)記方法,提取生產(chǎn)上應(yīng)用的不同甜瓜種質(zhì)基因組DNA,鑒定其枯萎病抗性的基因型。具體步驟如下(1)在NCBI數(shù)據(jù)庫(http://WWW· ncbi. nlm. nih. gov/)中找到甜瓜枯萎病抗性基因!^0111-2的序列信息,F(xiàn)om-2基因登錄號為AY583855。!^111-2基因?qū)儆贜BS-LRR類的R基因,編碼NBS和LRR兩個比較保守的結(jié)構(gòu)域。(2)設(shè)計引物并合成,在i^om-2基因LRR區(qū)兩端設(shè)計引物,引物序列如下
      Fom-2 正向引物GAGTCTATTGTTTCGCTTC反向引物TGCTCGTCTCTGGGTCACCTTC。(3)基因組DNA的提取(a)分別取0. 5g上述甜瓜抗病(Cantaloupe,高抗枯萎病材料)和感病種質(zhì)(仙果027-5,高感枯萎病材料)、Fp F2的不同甜瓜種質(zhì)嫩葉于研缽中,液氮狀態(tài)下研磨,加入 600 μ 1 65°C預(yù)熱的2 X CTAB (30 μ 1巰基乙醇混勻),轉(zhuǎn)移到離心管中,65°C保溫1小時。(b)加入600 μ 1的氯仿異戊醇(24/1的體積比)輕輕搖勻,4°C,13000rpm離心, 10分鐘。(C)取上清,重復(fù)(b)步驟一次。(d)取步驟(C)所得的上清于另一離心管中,加入與上清等體積的異丙醇,顛倒混勻,靜置5分鐘,13000rpm,離心10分鐘。(e)倒去上清,加入700 μ 1 Wash Buffer漂洗DNA沉淀,離心,重復(fù)一次。(f)加 15 μ ITE-Rnase, 37°C保溫 1 小時。(g)力口入 2mol/L NaCl 100 μ 1+100 % 乙醇 250 μ 1 混勻,-20 °C 靜置 30min, 13000rpm離心10分鐘。(h)倒去上清,加入500 μ 1 70% (體積比)乙醇,漂洗,倒去乙醇,重復(fù)一次,常溫晾干。
      ⑴加入30-50 μ 1 ddH20或TE,回溶,_20°C保存?zhèn)溆谩W?XCTAB配方CTAB 4gIM Tris-HCl (pH8. 0) 20mlEDTA 1. 488gNaCl 16. 352g先用70ml ddH20溶解,再定容至200ml滅菌,冷卻后0. 2_1%2_巰基乙醇000 μ 1) 氯仿-異戊醇04 1)先加96ml氯仿,再加細(xì)1異戊醇,搖勻即可。TE-Rnase :15 μ 1 TE 力口入 1/100 體積的 Rnase0Wash Buffer IOmmol/L 乙酸氨75% (體積比)乙醇(4)鏈?zhǔn)骄酆厦阜磻?yīng)(PCR)的試劑與條件首先將下列試劑混和在一起
      IOxTaq DNA聚合酶緩沖液5 μ
      模板DNA1 μ
      正向引物(1.25昭/1)0.4 μ
      反向引物(1.25昭/1)0.4 μ
      脫氧核苷酸混合物(dNTP)1 μ
      Taq DNA 聚合酶0.4 μ
      滅菌水41.8 μ
      總體積50 μ PCR反應(yīng)條件為94°C預(yù)變性:3min后,94 °C變性30s,50°C退火45s,72 °C延伸 1. 5min,35個循環(huán)后72°C延伸lOmin。PCR產(chǎn)物進(jìn)行1 %瓊脂糖凝膠電泳檢測。對目的條帶進(jìn)行克隆測序,具體方法如下(a)連接反應(yīng),離心管順序加入以下各組分H2O 2 μ 1T4DNALigase IOXBuffer 1 μ 1pUCM-T 載體1 μ 1PCR 產(chǎn)物4 μ 1PEG4000 1 μ 1T4DNALigase 1 μ 1 ;(b)感受態(tài)細(xì)胞的制備(CaCl2法制備感受態(tài)細(xì)胞):①挑取新活化的E. coli DH5a單菌落,接種于5ml LB液體培養(yǎng)基中,37°C下振蕩培養(yǎng)1 左右,直至對數(shù)生長后期。②將菌液以1 100-1 150的比例(重量比)接種于IOOml LB液體培養(yǎng)基中, 37°C下振蕩培養(yǎng)2h左右,至0D600 = 0. 5左右。
      ③將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)入離心管中,冰上放置lOmin,然后于4°C下IOOOOrpm離心lOmin。④棄上清,用預(yù)冷的0. lmol/L的CaC12溶液30ml輕輕懸浮細(xì)胞,冰上放置IOmin 后,4°C下IOOOOrpm離心lOmin。重復(fù)操作一次。⑤棄上清,加3ml預(yù)冷的含15% (體積比)甘油的0. lmol/L的CaCl2溶液輕輕懸浮細(xì)胞,冰上放置5min后,即成感受態(tài)細(xì)胞,分裝成200 μ 1的小份,置于_70°C保存?zhèn)溆谩?c)熱激法轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5 α ①取上述(b)步驟制備的感受態(tài)細(xì)胞懸浮液200 μ 1,搖勻后加入4μ 1上述(a)步驟的連接產(chǎn)物,用槍頭輕輕吹打均勻,冰浴30分鐘; ②42 °C保溫90秒,迅速放入冰中,冰浴5分鐘;③加入37°C預(yù)熱的Iml LB液體培養(yǎng)基(Amp_),混勻,37 °C保溫1個小時,使細(xì)胞恢復(fù)正常生長狀態(tài);④ 3000rpm 離心 10 分鐘;⑤棄去上清,余下的200 μ 1用槍頭輕輕吹打均勻,使細(xì)菌充分懸浮后均勻涂布于含 15 μ 1 X-Gal (20mg/ml)禾Π 100 μ 1 IPTG (24mg/ml)的 LB 篩選平板培養(yǎng)基上(Amp+);⑥37°C正面向上放置半個小時后,倒置培養(yǎng)8-12小時,觀察。LB培養(yǎng)基配方IOOrnl體系中加入以下各組分蛋白胨(Typtone)Ig酵母提取物(YeastExtract) 0. 5gNaCl IgNaOH (lmol/L) 100 μ 1先用70ml ddH20溶解,再定容至100ml,高壓高溫滅菌后4°C保存。(5)質(zhì)粒純化(a)在超凈工作臺中用無菌槍頭挑取單個白色菌落,接種于含50μ g/ml Amp的 5mlLB培養(yǎng)液中,37°C培養(yǎng)過夜。(b)取 l_2ml 菌液于 Epeendorf 管中,12000rpm 離心 1 分鐘;(c)加入100 μ 1 Solution I,用槍頭充分懸浮菌液;(d)加入 200 μ 1 Solution II,顛倒 Epeendorf 管,冰浴 3 分鐘;(e)加入 150 μ 1 預(yù)冷的 Solution III,顛倒 Epeendorf 管,冰浴 5 分鐘;(f) 40C,12000rpm離心5分鐘,上清液加入等體積的苯酚/氯仿混勻;(g) 40C,12000rpm離心5分鐘,上清液加入2倍體積的乙醇,室溫放置5分鐘;(h)4°C,12000rpm離心5分鐘,用70%乙醇漂洗一下,涼干沉淀,50 μ 1 TE融解沉淀,-20°C保存?zhèn)溆?。其中Solution I :100ml 體系lmol/L Tris-HCl (ρΗ8· 0) 2.5ml0. 5mol/L EDTA (pH8.0) 2.0ml20% Glucose (1. llmol/L) 4.5mldH20 91ml0108]高溫高壓滅菌后4°C保存。
      0109]SolutionII :100ml 體系
      0110]10% SDS IOml
      0111]2mol/LNaOH IOml
      0112]加滅菌水至100ml,充分混勻,室溫保存,最好現(xiàn)用現(xiàn)配。
      0113]SolutionIII :100ml 體系
      0114]KOAc 29. 4g
      0115]CH3COOH 11.5ml
      0116]加滅菌水至IOOml,高溫高壓滅菌后4°C保存。
      0117]序列測定與分析序列測定由上海英駿生物技術(shù)有限公司完成。將所得序列在
      Genebank及分子生物學(xué)軟件DNAMAN、Clustalff等分析,得到SNP位點信息(圖1)?!? CAPS 方法采用dCAPS 2. 0(http://helix. wustl.edu/dcaps/dcaps. html)軟件設(shè)計引物, 引物序列如下
      0120]CAPS 1 正向引物 5,-TGTTTGGAGAAAGTTGAAAGTC-3,
      0121]反向引物 5,-ACCATACAAACCTATCTCTATT-3,
      0122]CAPS2 正向引物 5,-GGAAGTGAGGTGTTGAATT-3,
      0123]反向引物 5,-TACACATTGGTCCGTTAGAC-3,
      0124]CAPS3 正向引物 5,-AGACGTAGCATTGCTTCTCTAG-3,
      0125]反向引物為 5,-TGGCATCCTTCAGCACCTTC-3,
      0126]反應(yīng)體系和條件同上,PCR產(chǎn)物分別采用AccI,EcoRI和)(baI限制性內(nèi)切酶進(jìn)行
      酶切,三種內(nèi)切酶均采用20 μ 1的反應(yīng)體系如下反應(yīng)體系
      PCR 產(chǎn)物5-10μ1
      0.1% BSA2μ1
      IOxbuffer2μ1
      酶5U補充dd H2O 至 20μ 1 ;將混合溶液置于37 °C,TaqI體系置于65 °C條件下各保溫4小時,產(chǎn)物采用 HDA-GT 12TM(eGene,USA)毛細(xì)管電泳系統(tǒng)進(jìn)行檢測。利用CAPS標(biāo)記分析F2群體遺傳規(guī)律,3個SNP位點均呈1:2:1的分離比例 (表1),符合孟德爾單基因遺傳規(guī)律,因此CAPS方法可以有效區(qū)分抗性和敏感植株。表1、CAPS方法鑒定的SNP位點在F2世代中遺傳分離
      權(quán)利要求
      1.用于甜瓜枯萎病抗性鑒定的功能性分子標(biāo)記一,其特征是 所述分子標(biāo)記一所采用的引物序列為CAPSl 正向引物為 5’ -TGCTCCTTTGGCTTCCTGT-3’反向引物為 5’ -GAGTCTATTGTTTCGCTTCA-3’。
      2.如權(quán)利要求1所述的功能性分子標(biāo)記一的用途,其特征是用于甜瓜枯萎病的分子輔助育種,或者用于鑒定甜瓜枯萎病抗性基因。
      全文摘要
      本發(fā)明公開了用于甜瓜枯萎病抗性鑒定的功能性分子標(biāo)記一,該分子標(biāo)記一所采用的引物序列為CAPS1正向引物為5’-TGCTCCTTTGGCTTCCTGT-3’,反向引物為5’-GAGTCTATTGTTTCGCTTCA-3’。該功能性分子標(biāo)記一用于甜瓜枯萎病的分子輔助育種,或者用于鑒定甜瓜枯萎病抗性基因。
      文檔編號C12N15/11GK102399885SQ20111037795
      公開日2012年4月4日 申請日期2010年4月15日 優(yōu)先權(quán)日2010年4月15日
      發(fā)明者張明方, 楊景華, 王士偉 申請人:浙江大學(xué)
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