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      小鼠ECM的制備方法及得到的不同來源的小鼠ECM和小鼠卵巢體內(nèi)再生的方法與流程

      文檔序號:11059329閱讀:2425來源:國知局
      小鼠ECM的制備方法及得到的不同來源的小鼠ECM和小鼠卵巢體內(nèi)再生的方法與制造工藝

      本發(fā)明涉及組織工程及醫(yī)學(xué)再生領(lǐng)域,尤其是小鼠ECM的制備方法及得到不同來源的小鼠ECM和小鼠卵巢體內(nèi)再生的方法。



      背景技術(shù):

      卵巢疾病是目前困擾女性的一大難題,但目前的治療都會對卵巢造成一定的損傷。2008年,心臟移植的成功再生開啟了ECM支架的研究熱潮。研究表明生物支架在物種間具有良好的保守性,并能很好的被異種宿主接受,在一定程度上降低了免疫排斥反應(yīng)。此外,天然的三維支架也能夠影響細(xì)胞的有絲分裂、細(xì)胞的分化,同時也含有利于細(xì)胞募集、增殖和分化的生長因子,促進(jìn)組織結(jié)構(gòu)的修復(fù)和重建。



      技術(shù)實現(xiàn)要素:

      本發(fā)明所要解決的技術(shù)問題是,提供一種小鼠ECM的制備方法及得到不同來源的小鼠ECM和小鼠卵巢體內(nèi)再生的方法。

      為了解決上述技術(shù)問題,本發(fā)明采用的技術(shù)方案是:一種小鼠ECM的制備方法,包括以下步驟:

      (1)取出小鼠的不同組織,將其置于不同濃度的洗滌劑中,處理不同的時間,然后使用滅菌水和PBS清洗洗滌劑,保證ECM中不含有洗滌劑;

      (2)對制備的ECM進(jìn)行組織學(xué)分析和生化分析,優(yōu)選出最好的小鼠ECM。

      所述步驟(1)中洗滌劑為SDS和Triton中的一種或兩種組合。

      優(yōu)選,所述組織為小鼠卵巢組織。

      所述步驟(2)包括對ECM的組織切片進(jìn)行H&E和DAPI染色,并對ECM的彈性蛋白、膠原和sGAG三種成分含量的測定以及殘留DNA量對比分析。

      上述的小鼠ECM的制備方法制得不同來源的小鼠ECM。

      一種小鼠卵巢體內(nèi)再生的方法,將獲得的小鼠ECM,移植回小鼠卵巢原位,不同時間點取出ECM,觀察其再生情況,并且對再生卵巢從再生效率、組織學(xué)分析、免疫組織化學(xué)分析、基因表達(dá)情況和生殖能力檢測五方面進(jìn)行分析鑒定。

      所述小鼠ECM移植回小鼠卵巢原位的方法:腹腔注射麻醉受體小鼠,用手術(shù)剪刀在背中線中部開口,用鑷子在背側(cè)將肌肉層扎破并伸入到體腔內(nèi),夾出與卵巢相連的脂肪組織,撕破卵巢包膜,夾取出卵巢,將制備好的ECM重新放回到卵巢包膜中,將其放回到體內(nèi),縫合傷口,做好標(biāo)記。

      所述再生效率=回收再生卵巢數(shù)量/移植小鼠卵巢數(shù)量×100%,計算再生效率;所述的組織學(xué)分析使用常規(guī)H&E染色的方法。

      所述免疫組織化學(xué)分析包括使用脫蠟、脫水、微波加熱抗原修復(fù)、血清封閉、一抗孵育、二抗孵育、AP顯色、復(fù)染、脫水、透明、封片、鏡檢。

      所述基因表達(dá)情況采用PCR和qPCR兩種實驗方法驗證不同基因的表達(dá)情況;所述生殖能力檢測包括雌雄小鼠比例為2:1合籠,檢查陰栓,觀察其生仔情況。

      本發(fā)明的有益效果是:首次成功的再生出小鼠卵巢,并且在移植四周后配對能夠成功的產(chǎn)生后代,進(jìn)一步為解決女性因卵巢功能停止造成的不孕癥提供了新的方法,為人類生殖做出新的貢獻(xiàn)。同時,脫細(xì)胞處理后的組織也在再生醫(yī)學(xué)的領(lǐng)域中具有更廣闊的應(yīng)用前景。本發(fā)明的方法簡便,成本低廉,實驗條件要求低,可操作性強。

      附圖說明

      圖1為本發(fā)明處理后的ECM與再生的卵巢形態(tài)學(xué)和組織學(xué)對比照片。

      圖2為不同基因的免疫組織化學(xué)表達(dá)情況照片。

      圖3為不同基因在移植后不同時間的表達(dá)情況圖。

      具體實施方式

      以下是對本發(fā)明的實施例作詳細(xì)說明:本實施例在以本發(fā)明技術(shù)方案為前提下進(jìn)行實施,給出了詳細(xì)的實施方式和具體的操作過程,但本發(fā)明的保護范圍不限于下述的實施例。

      本發(fā)明是通過以下的技術(shù)方案實現(xiàn)的,

      本發(fā)明提供小鼠ECM的制備方法,包括如下步驟:

      步驟一:收集小鼠卵巢或其他組織器官,分別采用不同的洗滌劑,用不同的濃度處理不同的時間,制備小鼠ECM。

      步驟二:使用無菌水和1xPBS清洗殘留的洗滌劑,兩種清洗液各洗八次,每兩小時換一次液,最后在PBS中加入雙抗,4℃?zhèn)溆谩?/p>

      步驟三:對制備的ECM進(jìn)行組織學(xué)分析和生化分析確定最佳處理條件。

      所述洗滌劑為SDS和Triton中的一種或兩種組合。

      所述不同的濃度洗滌劑和不同的處理時間是根據(jù)不同的組織來確定最佳的處理條件,例如卵巢組織的ECM使用的洗滌劑為(質(zhì)量體積百分比,克每毫升)1%、0.5%、0.2%的SDS,處理時間分別為6h、12h、20h。

      所述的ECM的組織學(xué)分析是固定不同濃度、不同時間處理的ECM,制作石蠟組織切片,分別用H&E和DAPI染色方法對組織切片進(jìn)行染色,根據(jù)染色結(jié)果初步鑒定ECM內(nèi)的細(xì)胞是否去除干凈。

      所述的ECM的生化分析包括測量ECM的彈性蛋白、膠原和sGAG三種成分在ECM中的含量以及殘留DNA的量。

      所述的SDS是購買于Sigma公司。

      將上述步驟二得到的小鼠ECM采用背部開口移植卵巢的方法,把支架移植到小鼠體內(nèi),一個月后觀察小鼠卵巢再生情況。

      所述的背部開口移植卵巢的方法,包括如下步驟:腹腔注射麻醉劑,麻醉小鼠5分鐘后,使用消毒后的手術(shù)剪刀在小鼠背部開口,扎破肌肉層,夾出與卵巢相連的脂肪組織。在卵巢包膜撕破一個小口,把卵巢剝離出來并取出來。最后挑取處理好的ECM,將其重新塞回到卵巢生長的原部位,將所有組織重新夾回到體腔內(nèi)側(cè),縫合傷口、做好標(biāo)記,觀察其術(shù)后情況。

      所述的麻醉劑是購買于Alfar的2.2.2-Tribromoethanol和Sigma的Tert-amylalcohol,儲液具體配置方法為在5g包裝的2.2.2-Tribromoethanol瓶中加入5ml Tert-amylalcohol,振搖至全部溶解。工作液為在35ml的生理鹽水中加入0.625ml儲液,充分混勻后用0.22um濾器過濾,貼好標(biāo)簽避光儲存于4℃。

      所述的實驗所需的小鼠均來自北京維通利華有限公司。

      所述的觀察小鼠卵巢的再生情況包括,在移植手術(shù)5天、10天、15天、20天、25天、30天這六個時間點取出小鼠移植后的ECM,并且進(jìn)一步用組織學(xué)、免疫組織化學(xué)、PCR等方法對再生卵巢組織進(jìn)行了驗證。

      所述的再生效率分析采用的分析公式為:再生效率=回收再生卵巢數(shù)量/移植小鼠卵巢數(shù)量×100%。

      所述的組織學(xué)分析取上述六個時間點移植后的小鼠再生的卵巢組織,固定之后制作石蠟組織切片,同樣采用H&E染色方法,與正常的卵巢組織切片對比,觀察不同時間點的卵巢組織形態(tài)學(xué)再生、發(fā)育情況。

      所述的免疫組織化學(xué)分析是利用不同時間點制作好的石蠟組織切片,經(jīng)過脫蠟復(fù)水、抗原熱修復(fù)、血清封閉、一抗孵育、二抗孵育、AP顯色、核固紅復(fù)染、脫水透明、封片然后鏡檢,觀察不同抗體的表達(dá)情況。

      所述的不同抗體的表達(dá)情況,抗體為blimp-1、stella、inhibinα、dazl、vasa、scp3、zp3、gdf9。上述抗體都購買于santa公司。

      所述的檢測基因的表達(dá)情況是采用PCR技術(shù)檢測回收的再生卵巢在不同時間點是否有blimp-1、stella、inhibinα、dazl、scp3、zp3、gdf9、oct4、ddx4等基因的表達(dá),同時還采用qPCR技術(shù)檢測上述基因的相對表達(dá)情況。

      所述的產(chǎn)生后代的情況是成功產(chǎn)子兩代,共16只F1代小鼠。

      本發(fā)明通過制作小鼠ECM以及小鼠卵巢原位移植技術(shù),成功回收到不同時間點的小鼠再生卵巢,并且配對后成功產(chǎn)生后代,證明移植后的小鼠ECM可以再生出卵巢。

      具體實施例如下:

      實施例一

      1.小鼠卵巢支架的制備與分析

      步驟一,小鼠卵巢支架的制備

      將4周齡雌性小鼠頸椎處死后,在體式解剖鏡下用75%的乙醇擦拭小鼠腹部,然后剪開腹部,沿雙角子宮及輸卵管找到卵巢。輕輕將卵巢包膜撕開,用鑷子從脂肪與卵巢連接的根部輕輕取下卵巢,放置于無菌的PBS中清洗一下,然后在50ml無菌的離心管中預(yù)先配置好(質(zhì)量體積百分比,克每毫升)1%、0.5%、0.2%的SDS,將取到的卵巢放于離心管中。在搖床中回旋轉(zhuǎn)動清洗小鼠卵巢,清洗時間分別為6h、12h、20h。SDS清洗完畢后,在超凈工作臺內(nèi)把離心管中的SDS倒掉,倒入無菌水,清洗殘留在卵巢支架內(nèi)的SDS。每隔兩個小時換一次無菌水,總共換無菌水8次。為了使支架移植到體內(nèi)后與體內(nèi)的滲透壓保持一致,接著使用無菌PBS以同樣的方法也換8次液,結(jié)束時加入2000U/ml的雙抗,4℃?zhèn)溆谩?/p>

      步驟二,小鼠卵巢支架的蠟塊制備

      將制備好的小鼠卵巢支架放置于10%的中性甲醛中固定24小時后,先用水沖洗組織12h,放到50%的酒精中過夜,然后使用自動脫水透明浸蠟機器,脫水、透明和浸蠟。其中脫水過程為75%乙醇1h——85%乙醇1h——95%乙醇40min——95%乙醇40min——100%乙醇40min——100%乙醇40min。透明過程為二甲苯Ⅰ(乙醇:二甲苯為1:1)40min——二甲苯Ⅱ40min——二甲苯Ⅲ40min。浸蠟過程為:石蠟Ⅰ(石蠟:二甲苯為1:1)1h——石蠟Ⅱ1h——石蠟Ⅲ1h。然后使用包埋機將支架包埋成蠟塊。

      步驟三,小鼠卵巢支架的切片分析

      (1)將制作好的支架蠟塊,使用石蠟切片機切成5mm的組織切片,52℃烘箱拷片過夜。進(jìn)行H&E染色,具體操作步驟為:二甲苯Ⅰ5min——二甲苯Ⅱ5min——無水乙醇2min——無水乙醇2min——95%乙醇2min——85%乙醇2min——75%乙醇2min——蘇木素染色液5min——蒸餾水水洗10min——伊紅染色液1min30s——無水乙醇1min——二甲苯Ⅰ3min——二甲苯Ⅱ3min——封片——鏡檢。根據(jù)鏡檢結(jié)果判斷是否有細(xì)胞殘留在卵巢支架中。

      (2)DAPI染色:二甲苯Ⅰ5min——二甲苯Ⅱ5min,無水乙醇2min——95%乙醇2min——85%乙醇2min——75%乙醇2min——PBS中浸泡3min——滴加DAPI染液100ul——暗室作用15min吸去多余染色液——PBS洗2次,每次5min——封片——鏡檢。

      (3)彈性蛋白染色:二甲苯Ⅰ5min——二甲苯Ⅱ5min——無水乙醇2min——95%乙醇2min——85%乙醇2min——75%乙醇2min——70%乙醇2min——蒸餾水水洗3min——地衣紅室溫染色3h——70%酒精分化2min——85%、95%酒精各復(fù)水2min——二甲苯透明3min——封片——鏡檢。

      (4)膠原染色:二甲苯Ⅰ5min——二甲苯Ⅱ5min——無水乙醇2min——無水乙醇2min——95%乙醇2min——95%乙醇2min——水流沖洗2min——Weigert氏蘇木素染色10min——水流沖洗10min——Van Gieson染色液染色1min——棄染液,用95%酒精快速分化數(shù)秒鐘——無水乙醇1min——二甲苯Ⅰ3min——二甲苯Ⅱ3min——封片——鏡檢。

      (5)sGAG染色:二甲苯Ⅰ5min——二甲苯Ⅱ5min——無水乙醇2min——無水乙醇2min——95%乙醇2min——95%乙醇2min——水流沖洗1min——1%阿爾新藍(lán)染液染10~30分鐘——水流沖洗約10min至顏色分明為止——1%中性紅水溶液染細(xì)胞核1分鐘——水洗2min——95%乙醇1min——無水乙醇1min——二甲苯Ⅰ3min——二甲苯Ⅱ3min——封片——鏡檢。

      (6)DNA含量測定:差量法稱量組織,設(shè)PCR管重量設(shè)為A、PCR管重量+組織重量設(shè)為B、組織重量設(shè)為C,則C=B-A,兩者之差即組織的重量。按照差量法稱重分別稱重大約10mg左右的組織,組織稱重后將組織切碎,每管中加入1ml提前預(yù)冷的0.85%生理鹽水,用勻漿儀將組織打碎成細(xì)胞懸液。簡短離心后即可按照Tiangen DNA提取試劑盒的基本流程提取DNA,260nm下測定吸光值,按照計算公式:DNA的干重含量(ng/mg)=OD260x50x(10/0.52)x體積/組織重量,即每毫克組織中含有的DNA含量。接著使用3%LMP含有EB的凝膠對DNA進(jìn)行電泳分析,紫外光下鑒定DNA片段的長度。

      (7)sGAG的測定:同樣采取差量法稱取卵巢組織,稱取約20mg的組織樣品,每管中加入1ml配制好的木瓜蛋白酶于65℃水浴3h,10000g離心10min。試樣—取出10ul上清液于一新離心管中,去離子水加至100ul;空白試劑加入100ul去離子水;標(biāo)準(zhǔn)曲線加入試管中分別加入1、2、3、4、5ug的標(biāo)準(zhǔn)試劑。以上每管加入1ml Blyscan染料試劑,倒置混勻,搖床震蕩30min,12000rpm離心10min,倒出未結(jié)合的染料,加入250ul解離試劑,充分渦旋混合。12000rpm離心5min去除浮沫。吸取200ul試樣于96孔板中,656nm下測定OD值。

      (8)彈性蛋白測定:差量法定量稱重10-20mg組織樣品并標(biāo)記好離心管,每管中加入750ul0.25M草酸置于95℃—100℃的水浴鍋中1h,將離心管冷卻至室溫,10000rpm離心10min,收集部分上清液,向離心管剩余的組織中繼續(xù)加入750ul 0.25M草酸再次加熱1h,收集兩次的上清液。檢測試樣加入500ulα-彈性蛋;空白試劑加入100ul去離子水;標(biāo)準(zhǔn)試劑加入12.5,25,50ul標(biāo)準(zhǔn)樣品。以上每管中加入等同體積的彈性蛋白沉淀試劑,渦旋混合后靜置15min,11000g離心10min后倒去上清液,加入1ml Sircol染料置于搖床中90min,11000g離心10min,倒出未結(jié)合染料后加入250ul解離試劑,渦旋混合。吸取200ul檢測試樣于96孔板中,513nm下測定OD值。

      (9)膠原測定:按照以上的方法稱取組織重量在10mg左右,每管中加入1.3ml冷酸-胃蛋白酶(0.5M乙酸中0.1mg/ml胃蛋白酶),4℃過夜。吸取1.0ml樣品加入100ul酸中和溶液,每管中加入冷分離和濃縮試劑(200ul/管)。倒置混勻,離心管放入試管架置于半冰半水的容器中,0-4℃下過夜。輕輕的移出試管,避免劇烈搖晃。12000rpm,10min離心從每管中緩慢吸出1000ul上清液棄去。檢測試樣加入100ul溶液;空白對照加入100ul/去離子水/0.5M乙酸//提取液;標(biāo)準(zhǔn)膠原加入5,10,15ug標(biāo)準(zhǔn)膠原。用空白試劑欄中的溶液加至100u,以上每管中加入1.0ml sircol染料,倒置混勻,將離心管置于搖床中30min,12000rpm 10min,小心翻轉(zhuǎn)并倒去未結(jié)合的染料溶液,小心將750ul冰-冷酸-鹽沖洗試劑加到球形的膠原-染料表面,12000rpm 10min離心,倒出沖洗試劑,用棉簽移出試管邊緣中剩余的液體,分別加入250ul堿試劑。離心管蓋上蓋,5min后漩渦混合,每管中吸取200ul樣品溶液加入96孔板中的每孔中,555nm測定吸光值。

      根據(jù)上述實驗結(jié)果分析得出0.2%SDS處理12h的DNA濃度為15.6731ug/ml,脫細(xì)胞程度為93.94%,不含有完整DNA片段,損失了2/3的sGAG,彈性蛋白還保持比較好的水平,膠原保留值為10%,綜上所述此處理條件對支架損失最小,為最佳的處理條件。

      2.小鼠卵巢支架原位移植與再生分析

      步驟一小鼠卵巢原位取出

      按腹腔注射0.015ml/g麻醉劑處理受體小鼠。用75%酒精棉球擦洗小鼠背部,使用消毒后的手術(shù)剪刀在在背中線中部開口,然后使用手術(shù)鑷子在背側(cè)腎臟偏下的位置將肌肉層扎破,將鑷子伸入到體腔內(nèi),夾出與卵巢相連的脂肪組織、卵巢、輸卵管和部分子宮角。在卵巢包膜的一側(cè)輕輕的撕破一個小口,把卵巢剝離出來。接著用鑷子夾取卵巢與脂肪連接的根部,將卵巢從其生長部位取出。

      步驟二小鼠卵巢支架原位移植

      挑取處理好的卵巢支架,找到卵巢包膜的破口處,使用碘酒浸泡的脫脂棉幫助去除卵巢的傷口處先止血,然后將處理的支架組織重新塞回到卵巢生長的原部位,接著把夾取出來的組織重新夾回到體腔內(nèi)側(cè),縫合傷口、打完耳標(biāo)后,將手術(shù)后的老鼠放回到鼠籠里,觀察其術(shù)后情況。

      步驟三小鼠卵巢再生分析

      (1)再生效率的分析

      小鼠卵巢原位移植支架一個月后回收再生的卵巢,記錄回收的數(shù)量并計算再生效率。

      (2)再生組織學(xué)的分析

      小鼠卵巢原位移植后,在移植后5天、10天、15天、20天、25天、30天這六個時間點分別回收再生的卵巢組織,利用上面所述的蠟塊制作方法,制作不同的蠟塊。使用石蠟切片機,制作5mm的石蠟切片。在高于石蠟熔點兩度的烘箱里,過夜烘片。第二天取出切片,

      經(jīng)過二甲苯Ⅰ10min——二甲苯Ⅱ10min——二甲苯Ⅲ10min——無水乙醇5min——無水乙醇5min——95%乙醇5min——95%乙醇5min——蘇木素染色液5min——蒸餾水水洗2min——伊紅染色液20s——95%乙醇5min——無水乙醇5min——二甲苯Ⅰ5min——二甲苯Ⅱ5min——二甲苯Ⅲ5min——封片——鏡檢。檢查在移植不同時間后,再生卵巢的形態(tài)學(xué)變化。

      (3)再生免疫組織化學(xué)分析

      根據(jù)上述所制作的石蠟切片,30度過夜烘片,然后52度烘片兩小時,進(jìn)行免疫組織化學(xué)實驗。主要檢測blimp-1、stella、inhibinα、dazl、scp3、zp3、gdf9、vasa八個基因的蛋白表達(dá)情況。具體操作如下:二甲苯Ⅰ10min——二甲苯Ⅱ10min——二甲苯Ⅲ10min——無水乙醇5min——無水乙醇5min——95%乙醇5min——95%乙醇5min——流水沖洗2min——1×PBS沖洗5min——0.01M的檸檬酸緩沖液抗原修復(fù)(使用微波爐修復(fù),大火修復(fù)6min,中火修復(fù)四次,每次90s,最后涼至室溫)——10%的血清封閉兩小時——一抗孵育4度過夜——1×PBS清洗3次,每次5min——37度二抗孵育2小時——1×PBS清洗3次,每次5min——AP顯色2-5min——1×PBS清洗2次,每次5min——核固紅復(fù)染1min-2min——流水沖洗3遍——95%乙醇5min——無水乙醇5min——二甲苯Ⅲ5min——二甲苯Ⅱ5min——二甲苯Ⅰ5min——封片——鏡檢。

      (4)基因表達(dá)情況分析

      取出不同時間回收的再生卵巢,單個再生卵巢提取RNA,反轉(zhuǎn)錄為cDNA。分別進(jìn)行PCR和qPCR,檢測blimp-1、stella、inhibinα、dazl、scp3、zp3、gdf9、oct4、ddx4各個基因在再生卵巢中的表達(dá)。

      其中采用Trizol法提取RNA,先取到新鮮的或者凍于液氮中的再生卵巢組織,切碎組織,至于200ul—500ul的Trizol中,置于室溫下消化組織5—10min之后再加入五分之一體積的氯仿,14000rpm離心5min,取上清,然后加入2.5倍體積無水乙醇-20℃沉淀2小時。取出后14000rpm離心10min,然后用75%乙醇清洗一遍,無酶水混勻后-20℃保存待用。下一步進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,使用Takara RR047A反轉(zhuǎn)錄試劑盒,根據(jù)試劑盒說明書反轉(zhuǎn)錄得到cDNA。

      PCR擴增上述9個基因。PCR引物(見SEQ ID NO.1-SEQ ID NO.20)與反應(yīng)體系見表1.1、表1.2。PCR反應(yīng)條件:預(yù)變性95℃,5min;變性95℃,30s,復(fù)性52℃,30s,延伸72℃,30s,30個循環(huán);最后延伸72℃,7min。

      實時定量qPCR是選擇相對定量的方法。RT-qPCR反應(yīng)條件:預(yù)變性95℃,5min;變性95℃,10s,復(fù)性55℃,20s,延伸72℃,30s,40個循環(huán)。

      表1.1目標(biāo)基因和管家基因的引物序列、PCR產(chǎn)物長度和退火溫度

      表1.2RT-PCR反應(yīng)體系

      表1.3RT-qPCR反應(yīng)體系

      (5)生殖能力的檢測

      原位移植一個月后的雌性小鼠與正常的雄性小鼠以2:1的比例合籠,最后成功繁育出兩代小鼠,共16只F1代小鼠。

      綜上結(jié)果表明經(jīng)過處理的天然的卵巢支架移植到卵巢原位,可以重新發(fā)育成正常的可以產(chǎn)生后代的卵巢。

      實施例二

      1.小鼠胸腺支架的制備與分析

      步驟一,小鼠胸腺支架的制備

      將4周齡雌性小鼠頸椎處死后,在體式解剖鏡下用75%的乙醇擦拭小鼠胸部,然后剪開胸部及胸腔,找到呈乳白色的兩葉胸腺。用鑷子從胸腺根部輕輕取下胸腺,放置于無菌的PBS中清洗一下,然后在50ml無菌的離心管中預(yù)先配置好(體積百分比)1%、0.5%、0.2%的TritonX-100,將取到的胸腺放于離心管中。在搖床中回旋轉(zhuǎn)動清洗小鼠胸腺,清洗時間分別為10h、15h、20h。清洗完畢后,在超凈工作臺內(nèi)把離心管的中TritonX-100倒掉,倒入無菌水,清洗殘留在胸腺支架內(nèi)的TritonX-100。每隔一個小時換一次無菌水,總共換無菌水8次。為了使支架移植到體內(nèi)后與體內(nèi)的滲透壓保持一致,接著使用無菌PBS以同樣的方法也換8次液,結(jié)束時加入2000U/ml的雙抗,4℃?zhèn)溆谩?/p>

      步驟二,小鼠胸腺支架的蠟塊制備

      同上述小鼠卵巢支架蠟塊制備一致

      步驟三,小鼠胸腺支架的切片分析

      同上述小鼠卵巢支架切片的分析方法也一樣,包括H&E染色、DAPI染色、sGAG染色、彈性蛋白染色、膠原染色。

      步驟四,小鼠胸腺支架的生化成分測定及分析

      同上述小鼠卵巢支架測定與分析方法一致,包括DNA含量及片段長度分析、sGAG、彈性蛋白和膠原的含量測定。

      2.小鼠卵巢支架原位移植與再生分析

      同上述小鼠卵巢支架原位移植方法移植。

      再生分析只包含了形態(tài)學(xué)與組織學(xué)的分析,所用的方法都與小鼠卵巢支架形態(tài)學(xué)與組織學(xué)的分析方法一致。

      實施例三

      1.小鼠睪丸支架的制備與分析

      步驟一,小鼠睪丸支架的制備

      將4周齡雌性小鼠頸椎處死后,在體式解剖鏡下用75%的乙醇擦拭小鼠腹部,然后剪開腹部,找到小鼠睪丸。用鑷子從睪丸基部輕輕取下睪丸,放置于無菌的PBS中清洗一下,然后在50ml無菌的離心管中預(yù)先配置好(體積百分比)1%、0.5%的SDS,將取到的睪丸放于離心管中。在搖床中回旋轉(zhuǎn)動清洗小鼠睪丸,清洗時間分別為20h、24h、30h。清洗完畢后,在超凈工作臺內(nèi)把離心管的中SDS倒掉,倒入無菌水,清洗殘留在睪丸支架內(nèi)的SDS。每隔;兩個小時換一次無菌水,總共換無菌水8次。為了使支架移植到體內(nèi)后與體內(nèi)的滲透壓保持一致,接著使用無菌PBS以同樣的方法也換8次液,結(jié)束時加入2000U/ml的雙抗,4℃?zhèn)溆谩?/p>

      步驟二,小鼠睪丸支架的蠟塊制備

      同上述小鼠卵巢支架蠟塊制備一致

      步驟三,小鼠睪丸支架的切片分析

      同上述小鼠卵巢支架切片的分析方法也一樣,包括H&E染色、DAPI染色、sGAG染色、彈性蛋白染色、膠原染色。

      步驟四,小鼠睪丸支架的生化成分測定及分析

      同上述小鼠卵巢支架測定與分析方法一致,包括DNA含量及片段長度分析、sGAG、彈性蛋白和膠原的含量測定。

      2.小鼠睪丸支架原位移植與再生分析

      同上述小鼠卵巢支架原位移植方法移植。

      再生分析只包含了形態(tài)學(xué)與組織學(xué)的分析,所用的方法都與小鼠卵巢支架形態(tài)學(xué)與組織學(xué)的分析方法一致。此外還包括了生殖能力的檢測,合籠后能夠得到后代。

      綜上結(jié)果表明經(jīng)過處理的天然的卵巢、胸腺、睪丸支架移植到卵巢原位,可以重新發(fā)育成正常的可以產(chǎn)生后代的卵巢。

      以上顯示和描述了本發(fā)明的基本原理、主要特征和本發(fā)明的優(yōu)點。本行業(yè)的技術(shù)人員應(yīng)該了解,本發(fā)明不受上述實施例的限制,上述實施例和說明書中描述的只是說明本發(fā)明的原理,在不脫離本發(fā)明精神和范圍的前提下本發(fā)明還會有各種變化和改進(jìn),這些變化和改進(jìn)都落入要求保護的本發(fā)明范圍內(nèi)。本發(fā)明要求保護范圍由所附的權(quán)利要求書及其等同物界定。

      以上顯示和描述了本發(fā)明的基本原理、主要特征和本發(fā)明的優(yōu)點。本行業(yè)的技術(shù)人員應(yīng)該了解,本發(fā)明不受上述實施例的限制,上述實施例和說明書中描述的只是說明本發(fā)明的原理,在不脫離本發(fā)明精神和范圍的前提下本發(fā)明還會有各種變化和改進(jìn),這些變化和改進(jìn)都落入要求保護的本發(fā)明范圍內(nèi)。本發(fā)明要求保護范圍由所附的權(quán)利要求書及其等同物界定。

      SEQUENCE LISTING

      <110> 戴雁峰

      <120> 小鼠ECM的制備方法及得到的不同來源的小鼠ECM和小鼠卵巢體內(nèi)再生的方法

      <130>

      <160> 20

      <170> PatentIn version 3.5

      <210> 1

      <211> 21

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 1

      ggctgtattc ccctccatcg t 21

      <210> 2

      <211> 23

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 2

      tggtgccaga tcttctccat gtc 23

      <210> 3

      <211> 20

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 3

      cgtggtacaa cccaaagcta 20

      <210> 4

      <211> 18

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 4

      ttggcacaga cattgcac 18

      <210> 5

      <211> 20

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 5

      ctttcaaagc cagtaaccag 20

      <210> 6

      <211> 20

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 6

      actgctgcaa cacattcata 20

      <210> 7

      <211> 22

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 7

      atgatacaga cgtcctacaa cc 22

      <210> 8

      <211> 19

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 8

      tctttcagca ccgacaaca 19

      <210> 9

      <211> 22

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 9

      cttatgtatt ccggccatcc ca 22

      <210> 10

      <211> 20

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 10

      ccccagatga tagcaccaga 20

      <210> 11

      <211> 21

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 11

      ccgagctgtg caattcccag a 21

      <210> 12

      <211> 21

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

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      aaccctctga gccaagggtg a 21

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      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 13

      agctgctgaa gcagaagagg 20

      <210> 14

      <211> 20

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 14

      ggttctcatt gttgtcggct 20

      <210> 15

      <211> 20

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 15

      ggaaaccagc agcaagtgat 20

      <210> 16

      <211> 19

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 16

      tggagtcctc atcctctgg 19

      <210> 17

      <211> 21

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 17

      ttatcatgtg cagccacgtc c 21

      <210> 18

      <211> 21

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 18

      tgatgacctg aactggtgaa c 21

      <210> 19

      <211> 19

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 19

      agcaccgtac tcattcacc 19

      <210> 20

      <211> 20

      <212> DNA

      <213> 小鼠(Mus musculus)

      <400> 20

      catgctaaac actccgtcct 20

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