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      一種高產(chǎn)γ-氨基丁酸重組大腸桿菌/pET-28a-lpgad的構(gòu)建方法及其應(yīng)用的制作方法

      文檔序號(hào):78482閱讀:762來(lái)源:國(guó)知局
      專利名稱:一種高產(chǎn)γ-氨基丁酸重組大腸桿菌/pET-28a-lpgad的構(gòu)建方法及其應(yīng)用的制作方法
      技術(shù)領(lǐng)域
      一種高產(chǎn)γ-氨基丁酸重組大腸桿菌/pET-28a-lpgad的構(gòu)建方法及其應(yīng)用,屬于發(fā)酵工程中生物技術(shù)領(lǐng)域
      。具體涉及一種構(gòu)建遺傳工程菌的方法、重組酶酶學(xué)性質(zhì)研究及其在轉(zhuǎn)化L-谷氨酸產(chǎn)Y-氨基丁酸上的應(yīng)用。
      背景技術(shù)
      Y-氨基丁酸(簡(jiǎn)稱GABA)是一種在中樞神經(jīng)系統(tǒng)中有效的抑制性神經(jīng)遞質(zhì),具有許多重要的生理功能,如降血壓、保持神經(jīng)安定、增強(qiáng)記憶、調(diào)節(jié)激素分泌、促進(jìn)生殖、保肝利腎等。近年來(lái),GABA的研究和應(yīng)用受到了廣泛的關(guān)注。目前,國(guó)內(nèi)外主要采用化學(xué)合成法和微生物法制備GABA,化學(xué)合成法反應(yīng)條件劇烈,污染嚴(yán)重;微生物發(fā)酵法條件溫和、安全、成本較低,但后處理過(guò)程復(fù)雜且生產(chǎn)周期長(zhǎng);全細(xì)胞轉(zhuǎn)化法合成GABA則可提高底物轉(zhuǎn)化率和產(chǎn)品純度,且具有節(jié)約后處理工序、縮短生產(chǎn)周期及降低環(huán)境污染等優(yōu)點(diǎn),越來(lái)越受到國(guó)內(nèi)外研究者的廣泛重視。
      本發(fā)明課題組專利“一株高效轉(zhuǎn)化L-谷氨酸為Y -氨基丁酸乳酸菌的選育”公開號(hào):101^8679A
      公開日:2010. 12. 29,該專利公開了以植物乳桿菌(LP-GB 01-21)為生產(chǎn)菌株,5L發(fā)酵罐水平,在pH5. 0乙酸-乙酸鈉緩沖液中進(jìn)行全細(xì)胞轉(zhuǎn)化,最終GABA濃度達(dá)到 132g/L,摩爾轉(zhuǎn)化率為94. 3%,產(chǎn)量明顯高于其他同類菌株,但由于植物乳桿菌是兼性厭氧微生物,培養(yǎng)條件較難控制,GABA的生產(chǎn)效率受培養(yǎng)條件影響較為顯著;同時(shí),植物乳桿菌中GAD的表達(dá)量受菌體代謝狀態(tài)的控制,表達(dá)量有限,全細(xì)胞轉(zhuǎn)化效率仍有待于提高。鑒于此,本研究擬通過(guò)構(gòu)建GAD高表達(dá)型重組大腸桿菌,借助大腸桿菌生長(zhǎng)迅速、易于高密度培養(yǎng)和GAD表達(dá)可以人工調(diào)控的優(yōu)點(diǎn)進(jìn)行GABA大規(guī)模和高效率生產(chǎn)。另外,GAD是生物催化 L-谷氨酸脫羧反應(yīng)生成Y -氨基丁酸的限速酶,通過(guò)對(duì)該酶的酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行研究,即酶的熱穩(wěn)定性、PH穩(wěn)定性及溫度、pH與酶活性的關(guān)系,幾種金屬離子對(duì)酶的影響,來(lái)確定該酶作用的合適條件指導(dǎo)全細(xì)胞轉(zhuǎn)化法合成GABA,并為工業(yè)化制備GABA提供了參考依據(jù)。

      發(fā)明內(nèi)容
      本發(fā)明的目的在于提供一種高產(chǎn)GABA重組大腸桿菌/pET-28a-lpgad的構(gòu)建方法,并對(duì)重組谷氨酸脫羧酶(GAD)酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行研究,根據(jù)酶學(xué)性質(zhì)的研究結(jié)果確定了最優(yōu)轉(zhuǎn)化條件,為微生物轉(zhuǎn)化L-谷氨酸為Y -氨基丁酸的工業(yè)化提供了有益的指導(dǎo)。
      本發(fā)明的技術(shù)方案提取總Lactobacillus plantarum染色體為模板,根據(jù) GeneBank公布的植物乳桿菌谷氨酸脫羧酶基因組序列設(shè)計(jì)引物如下
      Pl :5,-GACGGATCCATGGACCAGAAGCTGTTAAC-3‘;(下劃線為 BamH I 酶切位點(diǎn))
      P2 :5,GGCGCGGCCGCTCAGGTGTGTT TAAAGCTGTT-3,(下劃線為 Not I 酶切位點(diǎn))進(jìn)行 PCR擴(kuò)增,PCR 擴(kuò)增條件為94°C,5min 預(yù)變性;94°C 50s, 57°C Imin 30s,72°C 2min,35^ 循環(huán);72°C延伸lOmin。所得片段經(jīng)膠回收后與克隆載體pMD18-T連接,轉(zhuǎn)化Ε. coli JM109,經(jīng)過(guò)氨芐青霉素抗性平板篩選,挑取陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子。提取質(zhì)粒酶切鑒定,將重組質(zhì)粒命名為 T-Lpgad,采用相同限制性內(nèi)切酶分別對(duì)T-Ipgad和pET18a(+)進(jìn)行雙酶切,膠回收Ipgad 片段,將其與線性化載體pET48a(+)混合,在T4連接酶的作用下過(guò)夜連接,再轉(zhuǎn)化大腸桿菌E. coli BL2KDE3)感受態(tài)細(xì)胞,卡那霉素抗性篩選陽(yáng)性菌落,提取質(zhì)粒,進(jìn)行雙酶切驗(yàn)證,將符合預(yù)期結(jié)果的陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子于-80°C冰箱中保藏。
      取凍管保藏的菌種接種至含卡那霉素(終濃度為50 μ g/mL)的LB培養(yǎng)基中,37°C 振蕩培養(yǎng)過(guò)夜,次日轉(zhuǎn)接LB培養(yǎng)基中,IPTG誘導(dǎo)表達(dá),粗酶液采用比色法進(jìn)行酶活測(cè)定,一個(gè)酶活力單位(U)定義為在測(cè)定條件下每分鐘產(chǎn)生lymol GABA所需的酶量,粗酶液蛋白質(zhì)含量采用Bradford法測(cè)定,以BSA為標(biāo)準(zhǔn)蛋白。粗酶液經(jīng)Ni-NTA純化得到重組GAD,并對(duì)其酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行初步研究。
      通過(guò)對(duì)重組谷氨酸脫羧酶GAD酶學(xué)性質(zhì)的初步研究,確定了其最適作用溫度、最適PH以及具有較強(qiáng)促進(jìn)作用的金屬離子種類及濃度,根據(jù)酶學(xué)性質(zhì)的研究結(jié)果,對(duì)全細(xì)胞轉(zhuǎn)化條件進(jìn)行優(yōu)化,5L發(fā)酵罐水平,對(duì)重組菌進(jìn)行轉(zhuǎn)化產(chǎn)GABA實(shí)驗(yàn)。
      重組菌搖瓶種子培養(yǎng)基(g/L)葡萄糖1.0,蛋白胨3.0,玉米漿1.5,NaCl 0.3, K2HPO4O. 1,MgS047H20 0. 05。在 pH 6. 5 7. 0、121°C下滅菌 IOmin0
      重組菌發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L)葡萄糖5.0,蛋白胨10,玉米漿7. 5,NaCl 0.5, K2HPO4O. 1, MgS047H20 0. 05,L-谷氨酸 1. 0,生物素 2 X 1(Γ5。pH 6. 5 7. 0、121°C 下滅菌 IOmin0
      本發(fā)明的有益效果本發(fā)明課題組前期通過(guò)篩選、誘變獲得一株植物乳桿菌,該菌具有較高的谷氨酸脫羧酶酶活,但由于植物乳桿菌是兼性厭氧微生物,培養(yǎng)條件較難控制, 同時(shí),植物乳桿菌中GAD的表達(dá)量受菌體代謝狀態(tài)的控制,表達(dá)量有限,本實(shí)驗(yàn)克隆了該菌的GAD酶基因,實(shí)現(xiàn)了其在大腸肝菌中的異源表達(dá),且表達(dá)量高。利用pET28a上的多聚組氨酸標(biāo)簽,粗酶液過(guò)鎳柱純化,得到較純的重組酶GAD,并對(duì)該酶的酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行了初步研究,確定了該酶作用的最適PH、最適溫度、及不同金屬離子對(duì)其作用的影響。為改良全細(xì)胞轉(zhuǎn)化工藝提供了可靠的理論依據(jù)。
      根據(jù)酶學(xué)性質(zhì)的研究結(jié)果,對(duì)全細(xì)胞轉(zhuǎn)化條件進(jìn)行優(yōu)化,優(yōu)化后的轉(zhuǎn)化條件為 ρΗ4· 8乙酸-乙酸鈉緩沖液、2. 5mmol/L Ca2+、3. 5mmol/L Mg2+,轉(zhuǎn)化溫度37°C。在優(yōu)化后的轉(zhuǎn)化條件下,以50g/L的投料量進(jìn)行分批投料,轉(zhuǎn)化Mh,轉(zhuǎn)化液離心取上清,加入15%的三氯乙酸終止反應(yīng),取Iml進(jìn)行適當(dāng)稀釋后,氨基酸自動(dòng)分析儀測(cè)得轉(zhuǎn)化液中產(chǎn)物GABA濃度為 204. 5g/L,轉(zhuǎn)化率為 97. 92 %。
      產(chǎn)品純度高,轉(zhuǎn)化率高,轉(zhuǎn)化周期短,技術(shù)可移植性強(qiáng),只要一般的發(fā)酵車間(如抗生素、維生素、氨基酸生產(chǎn)車間)即可進(jìn)行生產(chǎn),不需購(gòu)置特殊設(shè)備和儀器,易于推廣應(yīng)用。


      圖1重組質(zhì)粒pET18a-lpgad的構(gòu)建;
      圖 2 重組質(zhì)粒 pET-28a-lpgad 的酶切驗(yàn)證 Lanel λ HindIII DNA marker ; Lane2pET-28a-lpgad/BamHI g| ;Lane3 pET-28a-lpgad/BamHI+NotI M^W ;Lane4 DS2000 DNA marker ;[0017] 3 Μ GAD ^ Lanel Supernatant of Ε. coli Β 21 ;Lane2 Supernatant of Ε. coli B121with recombinant plasmid pET_28a(+)-Ipgad ;Lane3 Protein markers(kDa);
      4 MM GAD ^ Ni-NTA ^tit Lanel Protein markers (kDa) ;Lane2 Supernatant of E.coliB121 with recombinant plasmid pET-28a(+)-Ipgad ;Lane3 Purified GAD ;
      圖5重組GAD最適pH (A)及其pH穩(wěn)定性(B);
      圖6重組GAD最適溫度㈧及其熱穩(wěn)定性⑶;
      圖7不同金屬離子及EDTA對(duì)重組GAD的影響(B);
      圖8不同不同濃度Ca2+ (A)、Mg2+⑶對(duì)GAD酶活的影響;
      圖 9 重組 GAD 的 Lineweaver-Burk 作圖;
      圖10氨基酸測(cè)定儀測(cè)定BL21/pET-28a-lpgad 5L發(fā)酵罐轉(zhuǎn)化液中底物與產(chǎn)物的
      含量圖譜;
      具體實(shí)施方式
      實(shí)施例1 重組大腸桿菌BL21/pET-28a-lpgad的構(gòu)建
      根據(jù) NCBI 中植物乳桿菌 Lactobacillus ρlantarum subsp. plantarum ST-III (GI :308044682)全基因組核酸序列32Μ37^ρ中的Ipgad基因序列,設(shè)計(jì)谷氨酸脫羧酶編碼基因的引物
      Pl =GAC(GGATCC)ATGGACCAGAAGCTGTTAAC(BamH I)
      P2 :GGC(GCGGCCGC)TCAGGTGTGTTTAAAGCTGTT (Not I)
      提取總Lactobacillus plantarum染色體為模板,PCR擴(kuò)增獲得目的基因片段, PCR 擴(kuò)增條件為 94°C,5min 預(yù)變性;94°C 50s, 57°C Imin 30s, 72°C 2min,;35 個(gè)循環(huán);72°C延伸lOmin。所得片段經(jīng)膠回收后與克隆載體pMDIS-T連接,轉(zhuǎn)化Ε. coli JM109,經(jīng)過(guò)氨芐青霉素抗性平板篩選,挑取陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子。提取質(zhì)粒酶切鑒定,將重組質(zhì)粒命名為T-Lpgad。 將T-Ipgad用BamHI和Not I進(jìn)行雙酶切,膠回收Ipgad片段,將其與經(jīng)相同雙酶切處理獲得的線性化載體pET48a(+)混合,加入T4連接酶,16°C過(guò)夜連接,再轉(zhuǎn)化大腸桿菌E. coli BL2KDE3)感受態(tài)細(xì)胞,卡那霉素抗性篩選陽(yáng)性菌落,提取質(zhì)粒,進(jìn)行雙酶切驗(yàn)證,如圖2所示,將符合預(yù)期結(jié)果的陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子保存在含有20%甘油的LB中,冷凍保存于-80°C。
      實(shí)施例2 重組谷氨酸脫羧酶的表達(dá)及Ni-NTA純化
      取凍管保藏的重組子接種至含卡那霉素(終濃度為50μ g/mL)的LB培養(yǎng)基中, 37°C振蕩培養(yǎng)過(guò)夜,次日按1 %接種量轉(zhuǎn)接,37°C培養(yǎng)至OD約0. 6-0. 8,加人IPTG至終濃度為0. 5mmol/L, 16°C過(guò)夜誘導(dǎo)表達(dá)。IPTG誘導(dǎo)后的菌液經(jīng)超聲波破碎細(xì)胞,上清液SDS-PAGE 分析,檢測(cè)到一條分子量約為53kDa的特異性條帶,如圖3所示。上清液測(cè)得比酶活為 8.53U/mg。
      將過(guò)夜誘導(dǎo)表達(dá)的菌液于10000r/min,4°C離心15min,收集菌體,用pH7. 4PBS緩沖液懸浮菌體,超聲波破碎細(xì)胞,然后經(jīng)0. 45 μ m濾膜過(guò)濾,選用表達(dá)載體pET-28a (+)中含有6 ·His-Tag編碼序列,過(guò)Ni-NTA純化GAD。純化后的GAD經(jīng)SDS-PAGE分析結(jié)果見圖3, 可看出經(jīng)過(guò)純化后得到相對(duì)單一的條帶,如圖4所示,基本上可以認(rèn)為已得到相對(duì)較純的 GAD酶蛋白。純化后酶液的比酶活達(dá)到32. 45U/mg,是純化前粗酶液酶活的3. 8倍,回收率達(dá) 53. 32%。
      實(shí)施例3 重組谷氨酸脫羧酶酶學(xué)性質(zhì)初步研究
      1)最適pH及pH穩(wěn)定性配制pH3. 6 6. 0的醋酸-醋酸鈉反應(yīng)緩沖液,30°C下將酶液分別與不同PH的反應(yīng)液混合,測(cè)定GAD在不同pH反應(yīng)體系中的酶活,考察pH對(duì)酶促反應(yīng)的影響。再將一定量的酶液加入到以上不同PH的反應(yīng)緩沖液中,30°C下分別保溫2h, 測(cè)定剩余酶活,考察GAD在不同pH條件下的穩(wěn)定性。
      2)最適溫度及熱穩(wěn)定性采用pH4. 8的反應(yīng)緩沖液,分別在20°C,25°C,30°C, 35 V,37 °C,40 V ,45 °C, 50 V ,55 °C, 60 V,65 °C,70 V下測(cè)定酶活,研究溫度對(duì)酶反應(yīng)的影響。將酶液置于以上不同溫度下保溫211、411、611、811、1011,測(cè)定剩余酶活,考察640在不同溫度下的穩(wěn)定性。
      3)不同金屬離子及EDTA對(duì)酶活的影響在反應(yīng)液中分別加入終濃度為lmmol/L 的 Ca2+、Mg2+、K+、Fe2+、Fe3+、Cu2+、Mn2+、Zn2+、Na+、Ag+、Al3+、Li2+ 以及 EDTA,30°C 下測(cè)定 GAD 酶活,以不加金屬離子的反應(yīng)液作為對(duì)照,研究不同金屬離子對(duì)其酶促反應(yīng)的影響。另外,對(duì)具有明顯激活作用的金屬離子,配制不同的濃度進(jìn)行梯度實(shí)驗(yàn)測(cè)定。
      4)Km值及Vmax的測(cè)定配制不同濃度的L-谷氨酸鈉底物溶液,分別與酶液在 30°C下反應(yīng),采用雙倒數(shù)作圖法確定GAD的Km及Vmax值。
      酶學(xué)性質(zhì)初步研究表明,最適pH為4. 8,在pH3. 6-5. 2范圍內(nèi)穩(wěn)定性較好,如圖5 所示;最適溫度為37°C,20V _40°C范圍內(nèi),保溫10h,相對(duì)酶活仍在85%以上,如圖6所示; Mn2+、Fe2/ Fe3/ Ag+、Cu2+均對(duì)植物乳桿菌GAD的活力有較大的抑制作用,Li+、K+、Na+等對(duì)活性影響不明顯,Ca2+、Mg2+對(duì)該酶有較強(qiáng)的激活作用,如圖7所示;如圖8所示,2. 5mmol/LCa2+ 時(shí)激活作用最明顯,相對(duì)酶活達(dá)1 %,3. 5mmol/L Mg2+對(duì)重組酶GAD的激活作用最強(qiáng),酶活達(dá)131% ;根據(jù)不同底物濃度與酶促反應(yīng)的關(guān)系,按照米氏方程,采用雙倒數(shù)作圖法,如圖9 所示,可以得到 Km 為 9. 21mmol/L, Vmax 為 7. 58mmol/L · min。
      實(shí)施例4 重組大腸桿菌轉(zhuǎn)化L-谷氨酸產(chǎn)GABA研究
      通過(guò)對(duì)重組谷氨酸脫羧酶GAD酶學(xué)性質(zhì)的初步研究,確定了其最適作用溫度、最適PH以及具有較強(qiáng)促進(jìn)作用的金屬離子種類及濃度,根據(jù)酶學(xué)性質(zhì)的研究結(jié)果,對(duì)全細(xì)胞轉(zhuǎn)化條件進(jìn)行優(yōu)化,優(yōu)化后的轉(zhuǎn)化條件為pH4. 8乙酸-乙酸鈉緩沖液、2. 5mmol/L Ca2+、 3. 5讓。1/LMg2+,轉(zhuǎn)化溫度 37°C。
      將斜面保藏的菌種接種至50ml (裝液量為10ml)LB培養(yǎng)基中,于旋轉(zhuǎn)式搖床中 37°C、160r/min培養(yǎng)1 進(jìn)行活化,再以5%的接種量接入500ml搖瓶(裝液量為100ml) 種子培養(yǎng)基中培養(yǎng)菌體,按上述條件培養(yǎng)24h得到種子液,按10%的接種量將培養(yǎng)好的種子液接入5L全自動(dòng)發(fā)酵罐(裝液量為3L),先于37°C、250r/min培養(yǎng)至0D_為0. 6,再向其中添加乳糖至終濃度為lg/L,同時(shí)在線控制pH6. 8流加葡萄糖,30°C,誘導(dǎo)發(fā)酵14h至0D_ 為13.6。將培養(yǎng)好的菌體進(jìn)行離心收集,雙蒸水洗滌三次,用乙酸-乙酸鈉緩沖液懸浮菌體,在優(yōu)化后的轉(zhuǎn)化條件下,以50g/L的投料量進(jìn)行分批投料,前期由于酶活水平較高,反應(yīng)速率較快,投料間隔為每池投料一次,隨著反應(yīng)的進(jìn)行,酶活有所下降,反應(yīng)速度變慢, 12h后,投料時(shí)間間隔延長(zhǎng)到他,在轉(zhuǎn)速250r/min、通氣量Ivvm的條件下轉(zhuǎn)化Mh,反應(yīng)結(jié)束后轉(zhuǎn)化液離心取上清,加入15%的三氯乙酸終止反應(yīng),取Iml進(jìn)行適當(dāng)稀釋后氨基酸自動(dòng)分析儀測(cè)得轉(zhuǎn)化液中產(chǎn)物GABA濃度為204. 5g/L,轉(zhuǎn)化率為97. 92%,如圖10所示。
      權(quán)利要求
      1.本專利構(gòu)建一株高效轉(zhuǎn)化L-谷氨酸為Y-氨基丁酸誘導(dǎo)型重組大腸桿菌,并對(duì)高表達(dá)谷氨酸脫羧酶酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行研究并應(yīng)用于重組菌轉(zhuǎn)化Y-氨基丁酸條件的優(yōu)化, 其特征是首次擴(kuò)增了經(jīng)多次誘變篩選獲得的具有較高谷氨酸脫羧酶活性的植物乳桿菌GB 01-21(保藏號(hào)CCTCC M 209102)的谷氨酸脫羧酶編碼基因lpgad,構(gòu)建高產(chǎn)Y -氨基丁酸重組大腸桿菌/pET-28a-lpgad。最終重組菌轉(zhuǎn)化液中產(chǎn)物GABA濃度為204. 5g/L,轉(zhuǎn)化率為 97. 92%。
      2.根據(jù)權(quán)利要求
      1所述高產(chǎn)Y-氨基丁酸重組大腸桿菌/pET-28a-lpgad的構(gòu)建方法, 其特征是以植物乳桿菌GB 01-21全基因組為模板,設(shè)計(jì)一對(duì)引物PCR擴(kuò)增谷氨酸脫羧酶基因lpgad,構(gòu)建重組質(zhì)粒pET18a-lpgad。根據(jù)GeneBank公布的植物乳桿菌谷氨酸脫羧酶基因組序列設(shè)計(jì)引物如下Pl 5' -GACGGATCCATGGACCAGAAGCTGTTAAC-3‘;(下劃線為 BamH I 酶切位點(diǎn))P2 5' -GGCGCGGCCGCTCAGGTGTGTT TAAAGCTGTT-3‘(下劃線為 Not I 酶切位點(diǎn))提取植物乳桿菌GB 01-21染色體為模板,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR擴(kuò)增條件為94°C,5min預(yù)變性; 940C 50s, 57 0C Imin 30s, 72°C 2min,;35 個(gè)循環(huán);72°C延伸 lOmin。所得片段經(jīng)膠回收后與克隆載體PMD18-T連接,轉(zhuǎn)化E. coli JM109,經(jīng)過(guò)氨芐青霉素抗性平板篩選,挑取陽(yáng)性轉(zhuǎn)化子。提取質(zhì)粒酶切鑒定,將重組質(zhì)粒命名為T-Lpgad,采用相同限制性內(nèi)切酶分別對(duì) T-Ipgad和pET48a(+)進(jìn)行雙酶切,膠回收Ipgad片段,將其與線性化載體pET48a(+)混合,在T4連接酶的作用下過(guò)夜連接,構(gòu)建重組質(zhì)粒pETj8a-lpgad。
      3.根據(jù)權(quán)利要求
      1所述,該重組大腸桿菌的基因表達(dá)產(chǎn)物經(jīng)鎳柱純化后獲得重組谷氨酸脫羧酶,大小為53kDa。
      4.根據(jù)權(quán)利要求
      1和3所述,重組谷氨酸脫羧酶酶學(xué)性質(zhì)特征在于最適pH為4.8,在 PH3. 6-5. 2范圍內(nèi)穩(wěn)定性較好;最適溫度為37°C,20°C _40°C范圍內(nèi),保溫10h,相對(duì)酶活仍在85%以上;2. 5mmol/L Ca2+時(shí)激活作用最明顯,相對(duì)酶活達(dá)巧4%,3. 5mmol/L Mg2+對(duì)重組酶GAD的激活作用最強(qiáng),酶活達(dá)131 % ;Km為9. 21mmol/L, Vmax為7. 58mmol/L。
      5.根據(jù)權(quán)利要求
      1所述酶學(xué)性質(zhì)在指導(dǎo)轉(zhuǎn)化條件優(yōu)化上的應(yīng)用,其特征是根據(jù)酶學(xué)性質(zhì)的研究結(jié)果,將轉(zhuǎn)化體系的溫度、PH分別調(diào)整至最適值,并向其中添加對(duì)重組酶GAD具有促進(jìn)作用的金屬離子,來(lái)確定最優(yōu)轉(zhuǎn)化條件。(1)重組菌搖瓶種子培養(yǎng)基(g/L)葡萄糖1.0,蛋白胨3.0,玉米漿1.5,NaCl0.3, K2HPO4O. 1,MgS047H20 0. 05。在 pH 6. 5 7. 0、121°C下滅菌 IOmin0重組菌發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L)葡萄糖5. 0,蛋白胨10,玉米漿7. 5,NaCl 0. 5,K2HPO4O. 1, MgS047H20 0. 05,L-谷氨酸 1. 0,生物素 2Χ1(Γ5。pH 6· 5 7· 0、121°C下滅菌 lOmin。(2)培養(yǎng)條件將斜面保藏的菌種接種至50ml(裝液量為10ml) LB培養(yǎng)基中,于旋轉(zhuǎn)式搖床中37°C、160r/min培養(yǎng)1 進(jìn)行活化,再以5 %的接種量接入500ml搖瓶(裝液量為 100ml)種子培養(yǎng)基中培養(yǎng)菌體,按上述條件培養(yǎng)24h得到種子液,按10%的接種量將培養(yǎng)好的種子液接入5L全自動(dòng)發(fā)酵罐(裝液量為3L),先于37°C、250r/min培養(yǎng)至0D_為0. 6, 再向其中添加乳糖至終濃度為lg/L,同時(shí)在線控制pH6.8流加葡萄糖,30°C,誘導(dǎo)發(fā)酵14h 至 OD6tltl 為 13.6。(3)5L發(fā)酵罐重組菌全細(xì)胞轉(zhuǎn)化條件為pH4.8乙酸-乙酸鈉緩沖液、2. 5mmol/L Ca2+、 3. 5mmol/L Mg2+,轉(zhuǎn)化溫度 37°C、250r/min。(4)在優(yōu)化后的轉(zhuǎn)化條件下,以50g/L的投料量進(jìn)行分批投料,前期由于酶活水平較高,反應(yīng)速率較快,投料間隔為每池投料一次,隨著反應(yīng)的進(jìn)行,酶活有所下降,反應(yīng)速度變慢,12h后,投料時(shí)間間隔延長(zhǎng)到6h,在轉(zhuǎn)速250r/min、通氣量Ivvm的條件下轉(zhuǎn)化Mh,反應(yīng)結(jié)束后轉(zhuǎn)化液離心取上清,加入15%的三氯乙酸終止反應(yīng),取Iml進(jìn)行適當(dāng)稀釋后,氨基酸自動(dòng)分測(cè)得轉(zhuǎn)化液中產(chǎn)物GABA濃度為204. 5g/L,轉(zhuǎn)化率為97. 92%。
      專利摘要
      一種高產(chǎn)γ-氨基丁酸重組大腸桿菌/pET-28a-lpgad的構(gòu)建方法及其應(yīng)用,屬于發(fā)酵工程中生物技術(shù)領(lǐng)域
      。具體涉及一種構(gòu)建遺傳工程菌的方法、重組酶酶學(xué)性質(zhì)研究及其在轉(zhuǎn)化L-谷氨酸產(chǎn)GABA上的應(yīng)用。首先,PCR擴(kuò)增獲得植物乳桿菌GB 01-21谷氨酸脫羧酶(GAD)基因,構(gòu)建了重組質(zhì)粒pET-28a-lpgad,并在E.coli BL21(DE3)成功表達(dá),其次,粗酶液采用Ni柱親和層析純化獲得重組GAD,并對(duì)其酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)行初步研究,用于指導(dǎo)轉(zhuǎn)化條件的優(yōu)化。最終5L發(fā)酵罐上進(jìn)行轉(zhuǎn)化實(shí)驗(yàn),GABA累積濃度可達(dá)204.5g/L,摩爾轉(zhuǎn)化率為97.92%,為進(jìn)一步工業(yè)化應(yīng)用打下了良好的基礎(chǔ)。
      文檔編號(hào)C12R1/19GKCN102367432SQ201110289796
      公開日2012年3月7日 申請(qǐng)日期2011年9月28日
      發(fā)明者田靈芝, 饒志明 申請(qǐng)人:江南大學(xué)導(dǎo)出引文BiBTeX, EndNote, RefMan
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