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      App等溫?cái)U(kuò)增快速檢測用引物、試劑盒和檢測方法

      文檔序號:8313469閱讀:334來源:國知局
      App等溫?cái)U(kuò)增快速檢測用引物、試劑盒和檢測方法
      【技術(shù)領(lǐng)域】
      [0001] 本發(fā)明具體設(shè)及一種APP等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)快速檢測用引物、試劑及其檢測方法。
      【背景技術(shù)】
      [000引 豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌(Actinobacillus pleuropneumoniae, APF0細(xì)菌是一 種無芽抱、有鞭毛和英膜的革蘭氏陰性小球桿菌,現(xiàn)歸類為放線菌屬(Actinomyces),包括 2個(gè)生物型15個(gè)血清型,不同血清型之間及同一血清型的不同菌株的毒力均存在差異,致 病性也有強(qiáng)弱之分,從而導(dǎo)致該病的診斷和治療非常困難。化ttison在1957年首次報(bào)道了 豬傳染性胸膜肺炎(porcine contagious pleuropneumonia, PCP)的爆發(fā),此后,Mtthews和 化ttison在1961年,olander于1963年相繼報(bào)道了該病。1964年shope報(bào)道了一起爆發(fā) 于阿根廷豬場的類似感染,而本病的病原菌曾由化ope和White等人在1964年根據(jù)其培養(yǎng) 特性而命名為胸膜肺炎嗜血桿菌(化emo地ilus pleuropneumoniae)。后來又經(jīng)Kihan等人 于1978年確定。1983年,Pohi等人通過DNA雜交試驗(yàn),胸膜肺炎嗜血桿菌和豬流感嗜血桿 菌間沒有明顯的同源性,而與李氏放線桿菌(Actinobacillus lignieresi)之間有較高同 源性。據(jù)此將該菌劃歸于己氏桿菌科(Pasteurellaceae),放線桿菌屬(Actinobacillus), 并命名為胸膜肺炎放線桿菌,也就是目前仍在使用的名稱。
      [000引 APP是PCP的病原菌,引起豬的呼吸道疾病,對豬有高特異性,是國際上公認(rèn)的危 害現(xiàn)代養(yǎng)豬業(yè)的五大疾病之一,給養(yǎng)豬業(yè)帶來了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。有報(bào)道從黑羊體內(nèi)分離 到該菌,人工感染小鼠后也可W重新分離到該菌。該病菌主要通過呼吸傳播,傳染性強(qiáng)。豬 感染該病后可表現(xiàn)為急性發(fā)病死亡到慢性感染及亞臨床癥狀等經(jīng)過。因此,APP在動(dòng)物群 中傳播對人類的生活和健康存在一定的潛在威脅。同時(shí)豬肉等肉制食品在人們的日常食用 中非常普遍,攜帶該細(xì)菌的肉制品對人的健康存在威脅,因而該細(xì)菌的檢測在出入境和食 品安全檢驗(yàn)中起著重要的作用。
      [0004] 我國在20世紀(jì)80年代初期,由于養(yǎng)豬方式大部分W分散飼養(yǎng)為主,本病發(fā)生較 少。20世紀(jì)90年代開始,隨著集約化養(yǎng)豬業(yè)的迅速發(fā)展,加上國家及地區(qū)間引種工作的日 益頻繁,本病的發(fā)病率及死亡率大大高于從前。國內(nèi)大多數(shù)省(區(qū)、市)經(jīng)病原學(xué)、血清學(xué) 診斷和檢疫,有此病發(fā)生的報(bào)道。說明PCP在我國已廣泛流行,并有擴(kuò)大蔓延之勢。目前 該病已經(jīng)成為我國豬呼吸系統(tǒng)的主要疾病。
      [0005] 國外較多使用PCR方法對APP進(jìn)行快速診斷,所選的目的基因多種多樣,如APX、 olmA、Tbps、ds祀-like等。APP引起豬致病有幾個(gè)毒力因素,溶血素(RT幻、英膜多糖(CP)、 脂多糖(LP巧、外膜蛋白(olmA)、轉(zhuǎn)鐵蛋白(Tbps)等。RTX存在于大部分致病性革蘭氏陰 性細(xì)菌中,同時(shí)也是APP的主要毒力因子之一。APP的15個(gè)血清型中共發(fā)現(xiàn)了 4種不同的 溶血毒素,即Apx I、Apx IKApx III、Apx IV。近年發(fā)現(xiàn),沒有一種血清型的APP能同時(shí)分 泌4種毒素,但APP所有血清型在感染動(dòng)物體內(nèi)都能分泌Apx IV毒素蛋白,因此ApxlV毒 素蛋白在建立檢測方法等方面具有潛在的理論價(jià)值和應(yīng)用前景,可用于區(qū)別診斷APP的感 染與非感染。血清PCR檢測雖為主要檢測手段,但其擴(kuò)增受實(shí)驗(yàn)條件、費(fèi)用高、假陽性率高 等因素的限制,不宜廣泛推廣;而血清學(xué)試驗(yàn)僅能反應(yīng)是否感染,并不能檢測細(xì)菌含量和分 型檢測。因此,發(fā)明一種可W同時(shí)鑒別檢測APP15種不同血清型的檢測方法對研究我國豬 肉中APP感染情況具有重要意義。國內(nèi)外在病原體的檢測方法,利用LAMP方法對多種動(dòng)物 疫病和微生物檢測已有很多報(bào)告,但在獸醫(yī)臨床診斷方法,APP診斷方法的報(bào)導(dǎo)并不多且靈 敏度不高。
      [0006] 環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增基因技術(shù)(loop-mediated isothermal amplication,簡稱LAMP) (國際專利公開號WO 00/28082)是2000年Notomi等開發(fā)出的一種核酸擴(kuò)增新技術(shù),針 對待測祀基因序列的8個(gè)區(qū)域設(shè)計(jì)一套3對特異引物,利用鏈置換DNA聚合酶炬St DNA polymerase)在64°C左右等溫條件下能夠特異性、高效、快速的進(jìn)行核酸擴(kuò)增,擴(kuò)增結(jié)果可 直接對擴(kuò)增副產(chǎn)物焦磯酸儀沉淀通過肉眼進(jìn)行判斷或檢測其濁度,也可用結(jié)合雙鏈的巧光 染料優(yōu)選SYBR Green I染色,即可通過肉眼判定。由于LAMP技術(shù)擴(kuò)增的3對引物是針對 祀基因的8個(gè)區(qū)段,因而具有比PCR更高的特異性,同時(shí)是等溫條件下即不需要PCR儀等特 殊儀器,且樣品的前處理非常簡單、單位時(shí)間內(nèi)擴(kuò)增效率更高等優(yōu)點(diǎn),已引起人們的關(guān)注。
      [0007] 中國發(fā)明專利(申請?zhí)枮椋?00710030435. (K200710030437. X、200710132320. 2、 200710026389.7、200810052321. (K200810015001. 8、200810093986. 6、200910041358. 8、 200910251055. 9、200910090037. 7、201010555073. 9、201110339104. X 等)分別公開了采用 等溫?cái)U(kuò)增基因技術(shù)檢測病菌和動(dòng)物疫病的方法。但是,目前尚無利用等溫?cái)U(kuò)增基因技術(shù)檢 測APP的試劑盒。

      【發(fā)明內(nèi)容】

      [000引為克服現(xiàn)有技術(shù)的不足,將LAMP擴(kuò)增技術(shù)運(yùn)用于APP的快速檢測,本發(fā)明的第一 個(gè)目的是提供一種豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)快速檢測用引物,第二個(gè)目的 是提供使用該引物的試劑盒,第=個(gè)目的是提供使用上述檢測用引物的試劑盒的使用方 法。
      [0009] 為了實(shí)現(xiàn)上述目的本發(fā)明采用如下技術(shù)方案:
      [0010] APP等溫?cái)U(kuò)增快速檢測用引物包括:
      [0011] DNA序列為SEQ ID NO. 1的豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌內(nèi)引物上游FIP ;
      [001引 DNA序列為SEQ ID NO. 2的豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌內(nèi)引物下游BIP ;
      [0013] DNA序列為SEQ ID NO. 3的豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌外引物上游F3 ;
      [0014] DNA序列為SEQ ID NO. 4的豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌外引物下游B3 ;
      [0015] DNA序列為SEQ ID NO. 5的豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌環(huán)引物上游LF ;
      [0016] DNA序列為SEQ ID NO. 6的豬傳染性胸膜肺炎放線桿菌環(huán)引物下游LB。
      [0017] 一種APP等溫?cái)U(kuò)增快速檢測用試劑盒,包括擴(kuò)增反應(yīng)液管、巧黃綠素顯色劑管、陽 性對照管、陰性對照管和滅菌去離子水管,其中:
      [0018] 所述擴(kuò)增反應(yīng)液管管內(nèi)由W下反應(yīng)液組成:
      [0019] DNA 序列為 SEQ ID NO. 1 的 60mmol/L 的 APP 內(nèi)引物上游 1. 0 y L ;
      [0020] DM 序列為 SEQ ID NO. 2 的 60mmol/L 的 APP 內(nèi)引物下游 1. 0 y L ;
      [002U DNA 序列為 SEQ ID NO. 3 的 5mmol/L 的 APP 外引物上游 1. 0 y L ;
      [002引 DNA序列為SEQ ID NO. 4的5mmol/L的APP外引物下游1. 0 y L ;
      [002引 DM序列為SEQ ID NO. 5的30mmol/L的APP環(huán)引物上游1. 0 y L ;
      [0024] DM 序列為 SEQ ID NO. 6 的 30mmol/L 的 APP 環(huán)引物下游 1. 0 y L ;
      [002引 2 X LAMP buffer 12. 5 y L ;
      [0026] 5U/ y L Bst DM 聚合酶 0. 8 y L ;
      [0027] 滅菌去離子水3. 7yL;
      [002引合計(jì)23 y L為單次反應(yīng)的用量;
      [0029] 所述陽性對照管,管內(nèi)為APP陽性重組質(zhì)粒DM,體積為20 y L。
      [0030] 所述陰性對照管,管內(nèi)為無APP感染豬肉組織基因組DM,體積為20 y L。
      [0031] 所述巧黃綠素顯色劑(Calcein顯色劑)管,管內(nèi)體積為20 y L ;
      [0032] 所述滅菌去離子水管ImL~2mL。
      [0033] 本發(fā)明還提供了一種利用上述試劑盒的APP等溫?cái)U(kuò)增快速檢測方法;包括如下步 驟:
      [0034] (1)樣品中核酸模板的提取:取200化~300化或200mg~300mg待檢樣品,可 選用相應(yīng)的市售商品化核酸提取試劑盒或?qū)嶒?yàn)室常規(guī)使用的提取細(xì)菌核酸的方法提取樣 品中的DNA,即為核酸模板;
      [0035] (2) LAMP反應(yīng)體系:取1 y L核酸模板或陽性對照或陰性對照,分別加入LAMP擴(kuò)增 反應(yīng)液23 y L Calcein顯色劑1 y L反應(yīng)體系的總體積為25 y L ;
      [0036] (3) LAMP擴(kuò)增條件;將步驟(2)配制好的反應(yīng)體系的PCR管于64 °C恒溫反應(yīng) 60min,80°C終止反應(yīng);
      [0037] (4)結(jié)果判定;通過LAMP Real Time Turbidimeter LA-320儀進(jìn)行實(shí)時(shí)觀察;陽性 擴(kuò)增在20min內(nèi)可見明顯的實(shí)時(shí)擴(kuò)增曲線和濁度擴(kuò)增曲線,陰性無任何擴(kuò)增;或者,反應(yīng)產(chǎn) 物顯現(xiàn)黃綠色則為陽性,澄色則為陰性;或者,通過肉眼觀察鑒定,與陰性對照管比較顯示, 檢測管出現(xiàn)明顯渾濁為陽性,未見渾濁為陰性。
      [003引本發(fā)明的原理是:針對一段232bp左右的祀序列上8個(gè)區(qū)域設(shè)計(jì)6條引物(2條外 引物、2條內(nèi)引物和2條環(huán)引物),利用核酸分子在64°C左右的溫度下處于自然松散狀態(tài), 采用具有鏈置換作用的Bst DNA聚合酶,在恒溫條件下對目的基因進(jìn)行高效擴(kuò)增,經(jīng)15~ 30min的反應(yīng),模板擴(kuò)增效率能達(dá)到109~10 W倍。由于該反應(yīng)不需要高溫節(jié)鏈、退火等步 驟,因此不需要昂貴的PCR儀。在反應(yīng)的Buffer反應(yīng)液里加入一種特殊的發(fā)光劑巧黃綠素 顯色劑,巧黃綠素顯色劑本身是一種發(fā)綠光的巧光,在本反應(yīng)中采用的巧黃綠素顯色劑是 被鋪離子整合處理過的,不能發(fā)黃綠色巧光,一旦LAMP反應(yīng)發(fā)生,產(chǎn)生的大量焦磯酸根離 子可競爭性地結(jié)合鋪離子,釋放出巧黃綠素顯色劑,導(dǎo)致反應(yīng)呈黃綠色,通過黃綠色巧光的 產(chǎn)生也能判定反應(yīng)結(jié)果。該種比較溫和的溫度條件W及沒有溫度循環(huán)使所需儀器簡單化, 克服了傳統(tǒng)PCR固有的檢測時(shí)間長、容易污染及檢測成本等缺點(diǎn)、此外,該檢測方法對檢測 人員的技術(shù)素質(zhì)要求較低,實(shí)際操作極為簡單,不需要特殊的試劑和儀器設(shè)備,有利于建立 成本低
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