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      用于制備shRNA的引物及制備方法、載體及構(gòu)建方法

      文檔序號(hào):9411511閱讀:6480來(lái)源:國(guó)知局
      用于制備shRNA的引物及制備方法、載體及構(gòu)建方法【
      技術(shù)領(lǐng)域
      】[0001]本發(fā)明涉及生物
      技術(shù)領(lǐng)域
      ,尤其涉及一種用于制備shRNA的引物及制備方法、載體及構(gòu)建方法?!?br>背景技術(shù)
      】[0002]RNA干擾(RNAinterference,RNAi)是一種普遍存在于生物體內(nèi)、序列特異性強(qiáng)、轉(zhuǎn)錄后水平的基因沉默機(jī)制。目前,采用RNAi技術(shù)快速實(shí)現(xiàn)生物體內(nèi)基因沉默已經(jīng)成為動(dòng)植物基因功能研究中一種有力的實(shí)驗(yàn)工具。[0003]由于動(dòng)植物體內(nèi)各自的特點(diǎn)及其RNAi作用機(jī)制的差異,當(dāng)今用于動(dòng)植物基因功能研究的RNAi的作用分子也有所不同。目前,應(yīng)用較為普遍的發(fā)揮干擾作用的小RNA分子在動(dòng)物體內(nèi)主要有siRNA(smallinterferingRNA)、shRNA(shorthairpinRNA)以amiRNA(artificialmicroRNA)等。而植物體內(nèi)主要有hpRNA(hairpinRNA)和amiRNA。最早采用RNAi技術(shù)研究生物體內(nèi)基因功能的方法是將體外制備好單鏈siRNA分子直接注入線蟲(chóng)體內(nèi),雖然后來(lái)在動(dòng)植物的基因功能研究中被沿用,但是這種方法的干擾時(shí)效性相對(duì)較短,為達(dá)到有效干擾而提高siRNA濃度又往往有細(xì)胞毒性。現(xiàn)在的RNAi技術(shù)采用的方法多為構(gòu)建一個(gè)特定的RNAi表達(dá)載體,該載體導(dǎo)入動(dòng)植物細(xì)胞后能由RNA聚合酶II型或III型啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄出相應(yīng)的shRNA、amiRNA以及hpRNA(hairpinRNA)等,進(jìn)而干擾與其靶基因的表達(dá)(PlantCell.2006.May;18(5):1121-33.)。[0004]目前,普遍用于構(gòu)建ShRNA干擾表達(dá)載體的方法主要有以下兩種:(I)寡核苷酸退火法,普遍做法是化學(xué)合成兩條特定的寡核苷酸引物,在離體條件下退火形成兩端帶有黏性末端的雙鏈shRNA片段,然后與經(jīng)過(guò)酶切處理同樣帶有黏性末端的載體連接轉(zhuǎn)化,得到含有shRNA干擾表達(dá)單元的重組質(zhì)粒。(II)PCR擴(kuò)增法:設(shè)計(jì)一對(duì)擴(kuò)增控制shRNA表達(dá)啟動(dòng)子的PCR引物,其中正向引物與啟動(dòng)子特異性匹配,反向引物5'末端額外加上針對(duì)目的基因的干擾靶序列,將PCR產(chǎn)物克隆到相應(yīng)的載體上,得到shRNA干擾表達(dá)載體(PhysiolGenomics.2007Novl4;31(3):554-62.)〇[0005]以上兩種方法雖然都能構(gòu)建各種RNA干擾表達(dá)載體,但也存在不足之處,主要表現(xiàn)在以下幾個(gè)方面:[0006]-、引物設(shè)計(jì)過(guò)長(zhǎng),容易產(chǎn)生突變,克隆效率低。方法(I)中使用的寡核苷酸單鏈通常為60-100nt,合成這種長(zhǎng)度的寡核苷酸單鏈不僅合成費(fèi)用大幅提高,而且堿基合成過(guò)程中的錯(cuò)誤率也會(huì)明顯增加,進(jìn)而增加了重組質(zhì)粒篩選的工作量,費(fèi)時(shí)費(fèi)力。二、操作繁瑣,不適合高通量構(gòu)建RNA干擾載體。[0007]以上兩類(lèi)制備shRNA序列的方法,對(duì)于構(gòu)建單個(gè)或少數(shù)RNA干擾載體雖然可行,但是對(duì)于大批量構(gòu)建RNA干擾載體來(lái)講,工作量大,操作繁瑣,效率低下。方法(II)需要在PCR引物中加上針對(duì)靶基因的干擾序列,通常需要長(zhǎng)引物(通常大于70nt)或者多輪的PCR擴(kuò)增反應(yīng),擴(kuò)增后的PCR產(chǎn)物也需要經(jīng)過(guò)復(fù)雜的雙酶切、回收等步驟,因外源片段一般都較?。?00bp以內(nèi)),回收純化效率較低,而且載體與非目的片段連接或自連的幾率很高,使后續(xù)的篩選鑒定過(guò)程復(fù)雜化,致使工作量增加。[0008]因此,現(xiàn)有技術(shù)還有待于改進(jìn)和發(fā)展?!?br/>發(fā)明內(nèi)容】[0009]鑒于上述現(xiàn)有技術(shù)的不足,本發(fā)明的目的在于提供一種用于制備shRNA的引物及制備方法、載體及構(gòu)建方法,本發(fā)明所提供的shRNA制備方法可快速、高效、低成本、高通量制備高保真性shRNA,尤其適合于大規(guī)模地構(gòu)建動(dòng)植物RNA干擾(RNAinterference,RNAi)表達(dá)載體,用于動(dòng)植物基因的功能研究,旨在解決現(xiàn)有技術(shù)中引物設(shè)計(jì)過(guò)長(zhǎng)、克隆效率低、操作繁瑣等問(wèn)題。[0010]一種用于制備ShRNA的引物,其中,包括三條引物P1、P2、P3;引物P1長(zhǎng)度為34nt,從5'端開(kāi)始,依次為突出的粘性末端ACCG,21nt的siRNA正向序列,loop序列,以及與siRNA正向序列3'末端3個(gè)堿基反向互補(bǔ)的堿基;引物P2,5'端4個(gè)堿基由ACCG改變?yōu)锳AAA,其余序列與P1相同;引物P3是siRNA正向序列5'末端18nt序列的反向互補(bǔ)序列;其中,loop序列為CTCGAG或ITCAAGAGA。[0011]一種shRNA的制備方法,其中,采用如上所述的三條引物退火合成雙鏈shRNA,包括以下步驟:[0012]針對(duì)目的基因設(shè)計(jì)和合成引物后,將引物Pl、P2和P3分別稀釋為10iiM的濃度后,以1:1:2的比例混合,再加入占總體積1/10的1MNaCl進(jìn)行退火;[0013]將上述混合充分的試劑置于已停止加熱的沸水中,然后待其自然降至室溫。[0014]-種shRNA的表達(dá)載體,其中,所述表達(dá)載體為慢病毒干擾載體,其中包含shRNA表達(dá)框、綠色熒光蛋白表達(dá)框;所述shRNA表達(dá)框包含shRNA表達(dá)啟動(dòng)子,采用如上所述的shRNA的制備方法制備得到的shRNA,以及致死基因ccdB;所述綠色熒光蛋白表達(dá)框包含EFla啟動(dòng)子和copGFP綠色熒光蛋白表達(dá)基因;[0015]所述shRNA表達(dá)啟動(dòng)子為啟動(dòng)子U6、H1或7SK之一。[0016]一種如上所述的shRNA的表達(dá)載體的制備方法,其中,包括以下步驟:[0017]制備載體骨架;[0018]在載體骨架上插入shRNA表達(dá)啟動(dòng)子;[0019]在載體骨架上插入ccdB序列;[0020]在載體骨架上插入如權(quán)利要求2所述的shRNA的制備方法制備得到的shRNA。[0021]所述的shRNA的表達(dá)載體的制備方法,其中,制備載體骨架的過(guò)程如下:[0022]以pCDFl-MCS2-EFl_copGFP載體為模板,PCR擴(kuò)增得到EFla-copGFP片段,用Mlul和Afel雙酶切PCR產(chǎn)物,然后插入到同樣經(jīng)過(guò)Mlul和Afel雙酶切的慢病毒載體pLVX-Puro上,得到載體骨架pLVX-EFla-copGFP-PGK-Puro;[0023]其中,用于擴(kuò)增EFla-copGFP的寡核苷酸引物為EFla-copGFP-F:5'-CGACGCGTCGAAGGATCTGCGATCGCTCCG-3';EFla-copGFP-R:5'-AGCGCTTTAGCGAGATCCGGTGGAGCCGG-3'。[0024]所述的shRNA的表達(dá)載體的制備方法,其中,插入shRNA表達(dá)啟動(dòng)子的過(guò)程如下:[0025]用Clal和Xhol雙酶切載體pLVX-EFla-copGFP-PGK-Puro,去磷酸后電泳回收;擴(kuò)增shRNA表達(dá)啟動(dòng)子的PCR產(chǎn)物,用Clal和Xhol雙酶切擴(kuò)增產(chǎn)物;將shRNA表達(dá)啟動(dòng)子連接到pLVX-EFla-copGFP-Puro線性載體的相應(yīng)位點(diǎn)上,轉(zhuǎn)入大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞中,涂LB平板,培養(yǎng)過(guò)夜,鑒定后得到的載體為pLVX-hU6/Hl/7SK-EFla-copGFP-PGK-Puro。[0026]所述的shRNA的表達(dá)載體的制備方法,其中,插入ccdB序列的過(guò)程如下:[0027]以pLenti6載體為模板,擴(kuò)增出含有大腸桿菌ccdB致死基因的片段,將擴(kuò)增的到的ccdB基因片段用Xhol和MluI雙酶切后,與經(jīng)過(guò)Xhol和MluI雙酶切的pLVX-hU6/Hl/7SK-EFla-copGFP-PGK-Puro線性載體連接,轉(zhuǎn)入大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞中,涂LB/amp平板,培養(yǎng)過(guò)夜,進(jìn)行菌落PCR及酶切鑒定,得到載體pLVX-hU6/Hl/7SK-ccdB-EFla-copGFP-PGK-Puro〇[0028]所述的shRNA的表達(dá)載體的制備方法,其中,插入shRNA的過(guò)程如下:[0029]用BsmBI單酶切shRNA慢病毒干擾載體pLVX-hU6/Hl/7SK-ccdB-EFla-copGFP-PGK-Puro,得到pLVX-hU6/Hl/7SK-EFla-copGFP-PGK-Puro載體骨架;將退火合成的shRNA序列與pLVX-hU6/Hl/7SK-EFla-copGFP-PGK-Puro載體骨架通過(guò)相應(yīng)的酶切位點(diǎn)連接;轉(zhuǎn)入大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞stable3,涂LB-Amp平板培養(yǎng)過(guò)夜,隨機(jī)挑取一個(gè)單克隆進(jìn)行測(cè)序,構(gòu)建得到表達(dá)shRNA的慢病毒干擾載體pLVX-hU6/Hl/7SK-shRNA-EFla-copGFP-PGK-Puro。[0030]所述的shRNA的表達(dá)載體的制備方法,其中,用于擴(kuò)增hU6啟動(dòng)子的寡核苷酸引物為hU6-ClaI-F:5'-CCATCGATGGAAGGTCGGGCAGGAAGAGG-3',hU6-XhoI-R:5'-CCGCTCGAGCGGTCGTCCTI當(dāng)前第1頁(yè)1 2 3 4 
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