本發(fā)明屬于基因工程技術(shù)領(lǐng)域,尤其涉及一種山羊TLR4基因敲除載體及其構(gòu)建方法。
背景技術(shù):
Toll樣受體(TLRs)是天然免疫系統(tǒng)中的一種重要模式識(shí)別受體,可選擇性識(shí)別病原微生物而啟動(dòng)天然免疫,在宿主天然免疫和獲得性免疫中具有重要作用。TLR4是TLRs家族的重要成員之一,是內(nèi)毒素脂多糖(LPS)最重要的模式識(shí)別受體,在介導(dǎo)陰性菌及其LPS的宿主反應(yīng)中發(fā)揮關(guān)鍵作用。
CRISPR/Cas9系統(tǒng)是細(xì)菌在噬菌體長(zhǎng)期的選擇壓力下進(jìn)化出來(lái)的一種有效抵御外源DNA入侵的免疫機(jī)制之一。在菌體內(nèi),CRISPR簇在其前導(dǎo)區(qū)的調(diào)控下轉(zhuǎn)錄成precrRNA,并在tracrRNA和Cas9參與下加工成成熟的crRNA,引導(dǎo)crRNA/tracrRNA/Cas9復(fù)合體識(shí)別結(jié)合外源DNA特定序列,剪切DNA雙鏈,從而沉默外源基因的表達(dá)。CRISPR/Cas9系統(tǒng)被開(kāi)發(fā)成了一種新型的基因打靶系統(tǒng)。相對(duì)于較早的RNAi、ZFN和TALEN系統(tǒng),這種新型打靶系統(tǒng)具有操作簡(jiǎn)單、成本低、效率高、可同時(shí)沉默任意數(shù)量基因等優(yōu)點(diǎn)。目前,該項(xiàng)技術(shù)已經(jīng)應(yīng)用于細(xì)菌、斑馬魚(yú)、小鼠、大鼠、家蠶以及哺乳動(dòng)物和人類(lèi)細(xì)胞系等,且都表現(xiàn)出較強(qiáng)的基因組編輯活性。Hu等(2014)應(yīng)用該技術(shù)對(duì)山羊成纖維細(xì)胞中NUP155基因進(jìn)行了敲除,發(fā)現(xiàn)23個(gè)單細(xì)胞克隆中有5個(gè)發(fā)生了NUP155基因突變。Wang等(2015)采用CRISPR/Cas9技術(shù)對(duì)山羊MSTN和FGF5基因進(jìn)行了敲除。以上研究提示該技術(shù)可以成功用于山羊基因敲除。
目前采用ZFNs或TALENs進(jìn)行基因敲除,對(duì)每個(gè)基因位點(diǎn)編輯都需要設(shè)計(jì)和組裝兩個(gè)核酸酶,構(gòu)建技術(shù)難度較大、構(gòu)建組裝時(shí)間較長(zhǎng)。另外,傳統(tǒng)基因敲除,主要是應(yīng)用基因重組原理通過(guò)插入突變和靶向技術(shù)使目的基因功能喪失。
然而,目前在山羊上關(guān)于TLR4基因敲除及相關(guān)功能研究尚未見(jiàn)報(bào)道。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的在于提供一種山羊TLR4基因敲除載體及其構(gòu)建方法,旨在解決目前采用ZFNs或TALENs進(jìn)行基因敲除,對(duì)每個(gè)基因位點(diǎn)編輯都需要設(shè)計(jì)和組裝兩個(gè)核酸酶,因而構(gòu)建技術(shù)難度較大、構(gòu)建組裝時(shí)間較長(zhǎng);而且傳統(tǒng)基因敲除,主要是應(yīng)用基因重組原理通過(guò)插入突變和靶向技術(shù)使目的基因功能喪失的問(wèn)題。
本發(fā)明是這樣實(shí)現(xiàn)的,一種山羊TLR4基因敲除載體,該山羊TLR4基因敲除載體的sgRNA核苷酸序列為:
TLR4-gRNA-Lg1:GACTCATATTCAGCACCTGAAGG;
TLR4-gRNA-Rg1:TCACAACAAACTCTTGTCATTGG。
一種引物Oligo,該引物Oligo序列為:
F-TLR4-gRNA-L1:CACCGACTCATATTCAGCACCTGA;
R-TLR4-gRNA-L1:AAACTCAGGTGCTGAATATGAGTC;
F-TLR4-gRNA-R1:CACCGTCACAACAAACTCTTGTCAT;
R-TLR4-gRNA-R1:AAACATGACAAGAGTTTGTTGTGAC。
一種表達(dá)sgRNA核苷酸的質(zhì)粒PYSY-sgRNA,該質(zhì)粒PYSY-sgRNA為:pYSY-CMV-Cas9n-U6-TLR4-gRNA-L2-SV40-Neo質(zhì)粒和pYSY-CMV-Cas9n-U6-TLR4-gRNA-R2-EF1a-eGFP質(zhì)粒。
本發(fā)明另一目的在于提供一種山羊TLR4基因敲除載體的構(gòu)建方法,該山羊TLR4基因敲除載體的構(gòu)建方法包括:
采用CRISPR/cas9系統(tǒng),首先設(shè)計(jì)TLR4基因的sgRNA片段,合成sgRNA核苷酸序列;
構(gòu)建同時(shí)表達(dá)sgRNA和Cas9D10A的質(zhì)粒PYSY-sgRNA,連接并轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞;
最后對(duì)轉(zhuǎn)化子進(jìn)行驗(yàn)證。
進(jìn)一步,該山羊TLR4基因敲除載體的構(gòu)建方法具體包括:
引物退火:將1ul 100uM的F-Oligo、1ul的100uM R-Oligo、8ul YSY oligo退火緩沖液混合于PCR管內(nèi),在PCR儀中以每分鐘1.5℃逐漸從95℃降至22℃;
連接:0.5ul退火產(chǎn)物,1ul YSY線性化三合一CRISPR/Cas9n質(zhì)粒,1ul T4連接酶,2ul 5*T4Buffer,5.5ul Milli Q;
轉(zhuǎn)化:室溫15min后用pfu≥108的大腸桿菌DH5a感受態(tài)細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)化;
轉(zhuǎn)化子驗(yàn)證:轉(zhuǎn)化涂板后挑取單克隆進(jìn)行10ul體系菌液PCR驗(yàn)證;
經(jīng)PCR初步鑒定后進(jìn)行測(cè)序;
菌液37℃過(guò)夜培養(yǎng),無(wú)內(nèi)毒素質(zhì)粒大提試劑盒提取質(zhì)粒,并采用微量紫外分光光度計(jì)測(cè)定質(zhì)粒濃度。
進(jìn)一步,所述轉(zhuǎn)化涂板后挑取單克隆進(jìn)行10ul體系菌液PCR驗(yàn)證,具體包括:挑取單克隆0.5ul菌液,0.5ul YSY驗(yàn)證正向引物,0.5ul R-Oligo,5ulMastermix,3.5ul MilliQ;PCR反應(yīng)條件為:1):95℃預(yù)變性2mim;2):94℃變性30s;3):56℃退火30s;4):72℃延伸30s;步驟2)到步驟4)運(yùn)行35個(gè)循環(huán);5):72℃再延伸10min;6):4℃保存。
本發(fā)明提供的山羊TLR4基因敲除載體及其構(gòu)建方法中CRISPR/Cas9系統(tǒng),是新開(kāi)發(fā)的一種新型的基因打靶系統(tǒng),利用細(xì)菌或古生菌中存在的的CRISPR簇,在其前導(dǎo)區(qū)的調(diào)控下轉(zhuǎn)錄成precrRNA,并在tracrRNA和Cas9參與下加工成成熟的crRNA,cRNA和tracrRNA二者結(jié)合形成的復(fù)合物成為,sgRNA與Cas9核酸內(nèi)切酶結(jié)合,并引導(dǎo)其識(shí)別結(jié)合外源DNA特定序列,剪切DNA雙鏈,從而沉默外源基因的表達(dá)。
本發(fā)明采用CRISPR/Cas9系統(tǒng)構(gòu)建TLR4基因敲除載體,方法簡(jiǎn)單快捷,只需針對(duì)該基因敲除位點(diǎn)設(shè)計(jì)一個(gè)長(zhǎng)約20bp左右的sgRNA,然后連接通用的Cas9基因即可,而采用ZFNs或TALENs進(jìn)行基因敲除,對(duì)每個(gè)基因位點(diǎn)編輯都需要設(shè)計(jì)和組裝兩個(gè)核酸酶,構(gòu)建技術(shù)難度較大、構(gòu)建組裝時(shí)間較長(zhǎng)。因此,與傳統(tǒng)的ZFNs、TALENs等基因敲除技術(shù)比較而言,采用CRISPR/Cas9構(gòu)建基因敲除載體更為簡(jiǎn)單快捷,便于進(jìn)一步推廣和應(yīng)用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
另外,傳統(tǒng)基因敲除,主要是應(yīng)用基因重組原理通過(guò)插入突變和靶向技術(shù)使目的基因功能喪失,與ZFN和TALEN這兩種人工核酸酶相比,CRISPR/Cas9系統(tǒng)中的Cas9作為切口酶,具有單鏈切割活性,可以在特定位置制造單鏈切口,這樣基本不會(huì)引起非同源末端連接,從而高效地介導(dǎo)外源基因的定點(diǎn)敲入,或?qū)蚪M進(jìn)行點(diǎn)突變,大大降低了非同源末端連接所帶來(lái)的風(fēng)險(xiǎn)。
本發(fā)明構(gòu)建的載體,利用RNA導(dǎo)向的CRISPR-Cas9系統(tǒng)形成雙切口,在未影響靶向切割效率的前提下大大降低了脫靶效應(yīng),提高基因敲除效率。
本發(fā)明采用CRISPR/Cas9系統(tǒng)構(gòu)建TLR4敲除載體,為后續(xù)獲得山羊TLR4基因缺失型肺泡上皮細(xì)胞系、研究山羊肺炎支原體感染的免疫應(yīng)答分子機(jī)制提供理論依據(jù)。
附圖說(shuō)明
圖1是本發(fā)明實(shí)施例提供的山羊TLR4基因敲除載體的構(gòu)建方法流程圖;
圖2是本發(fā)明實(shí)施例提供的PCR驗(yàn)證克隆電泳圖片示例一;
圖中:Marker:Trans 2K Plus DNA Marker,從下到上依次為100bp,250bp,500bo,750bp,1000bp,3000bp,5000bp;2:陰性對(duì)照;3-6:TLR4-gRNA-Rg1克隆。
圖3是本發(fā)明實(shí)施例提供的PCR驗(yàn)證克隆電泳圖片示例二;
圖中:Marker:Trans 2K Plus DNA Marker,從下到上依次為100bp,250bp,500bo,750bp,1000bp,3000bp,5000bp;2:陰性對(duì)照;3-6:TLR4-gRNA-Lg1克隆。
具體實(shí)施方式
為了使本發(fā)明的目的、技術(shù)方案及優(yōu)點(diǎn)更加清楚明白,以下結(jié)合實(shí)施例,對(duì)本發(fā)明進(jìn)行進(jìn)一步詳細(xì)說(shuō)明。應(yīng)當(dāng)理解,此處所描述的具體實(shí)施例僅僅用以解釋本發(fā)明,并不用于限定本發(fā)明。
下面結(jié)合附圖對(duì)本發(fā)明的應(yīng)用原理作進(jìn)一步描述。
本發(fā)明實(shí)施例提供的山羊TLR4基因敲除載體,該山羊TLR4基因敲除載體的sgRNA核苷酸序列為:
SEQ ID NO1:TLR4-gRNA-Lg1:GACTCATATTCAGCACCTGAAGG;
SEQ ID NO2:TLR4-gRNA-Rg1:TCACAACAAACTCTTGTCATTGG。
一種引物Oligo,該引物Oligo序列為:
SEQ ID NO3:F-TLR4-gRNA-L1:CACCGACTCATATTCAGCACCTGA;
SEQ ID NO4:R-TLR4-gRNA-L1:AAACTCAGGTGCTGAATATGAGTC;
SEQ ID NO5:F-TLR4-gRNA-R1:CACCGTCACAACAAACTCTTGTCAT;
SEQ ID NO6:R-TLR4-gRNA-R1:AAACATGACAAGAGTTTGTTGTGAC。
本發(fā)明提供的一種表達(dá)sgRNA核苷酸的質(zhì)粒PYSY-sgRNA,該質(zhì)粒PYSY-sgRNA為:pYSY-CMV-Cas9n-U6-TLR4-gRNA-L2-SV40-Neo質(zhì)粒和pYSY-CMV-Cas9n-U6-TLR4-gRNA-R2-EF1a-eGFP質(zhì)粒。
如圖1所示:本發(fā)明實(shí)施例提供的山羊TLR4基因敲除載體的構(gòu)建方法,該山羊TLR4基因敲除載體的構(gòu)建方法包括:
S101:采用CRISPR/cas9系統(tǒng),首先設(shè)計(jì)TLR4基因的sgRNA片段,合成sgRNA核苷酸序列;
S102:構(gòu)建同時(shí)表達(dá)sgRNA和Cas9D10A的質(zhì)粒PYSY-sgRNA,連接并轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞;
S103:最后對(duì)轉(zhuǎn)化子進(jìn)行驗(yàn)證。
進(jìn)一步,該山羊TLR4基因敲除載體的構(gòu)建方法具體包括:
引物退火:將1ul 100uM的F-Oligo、1ul的100uM R-Oligo、8ul YSY oligo退火緩沖液混合于PCR管內(nèi),在PCR儀中以每分鐘1.5℃逐漸從95℃降至22℃;
連接:0.5ul退火產(chǎn)物,1ul YSY線性化三合一CRISPR/Cas9n質(zhì)粒,1ul T4連接酶,2ul 5*T4Buffer,5.5ul Milli Q;
轉(zhuǎn)化:室溫15min后用pfu≥108的大腸桿菌DH5a感受態(tài)細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)化;
轉(zhuǎn)化子驗(yàn)證:轉(zhuǎn)化涂板后挑取單克隆進(jìn)行10ul體系菌液PCR驗(yàn)證:0.5ul菌液,0.5ul YSY驗(yàn)證正向引物,0.5ul R-Oligo,5ul Mastermix,3.5ul MilliQ;
PCR反應(yīng)條件為:
1):95℃預(yù)變性2mim;
2):94℃變性30s;
3):56℃退火30s;
4):72℃延伸30s;步驟2)到步驟4)運(yùn)行35個(gè)循環(huán);
5):72℃再延伸10min;
6):4℃保存;
經(jīng)PCR初步鑒定后進(jìn)行測(cè)序;
菌液37℃過(guò)夜培養(yǎng),無(wú)內(nèi)毒素質(zhì)粒大提試劑盒提取質(zhì)粒,并采用微量紫外分光光度計(jì)測(cè)定質(zhì)粒濃度。
下面結(jié)合試驗(yàn)方法對(duì)本發(fā)明的應(yīng)用原理作進(jìn)一步描述
1材料和方法
1.1材料
Trans2K Plus DNA Marker購(gòu)自全式金生物技術(shù)有限公司,CRISPR/Cas9n質(zhì)粒購(gòu)自南京堯舜禹公司,大腸桿菌DH5a感受態(tài)細(xì)胞、T4連接酶、無(wú)內(nèi)毒素質(zhì)粒大提試劑盒均購(gòu)自天根生化有限公司。陽(yáng)離子脂質(zhì)體2000(Invitrogen)。PCR引物由上海鉑尚生物技術(shù)有限公司合成。
1.2方法
1.2.1sgRNA靶點(diǎn)確定和引物設(shè)計(jì)
根據(jù)山羊TLR4基因(GenBank:HQ263215.1),找到CDS序列并分析其結(jié)構(gòu),根據(jù)該基因結(jié)構(gòu)確定敲除位點(diǎn),選擇外顯子序列輸入到軟件中,得到gRNA序列。并根據(jù)設(shè)計(jì)生成的sgRNA,設(shè)計(jì)并合成對(duì)應(yīng)的引物Oligo如下:
F-TLR4-gRNA-L1:CACCGACTCATATTCAGCACCTGA;
R-TLR4-gRNA-L1:AAACTCAGGTGCTGAATATGAGTC;
F-TLR4-gRNA-R1:CACCGTCACAACAAACTCTTGTCAT;
R-TLR4-gRNA-R1:AAACATGACAAGAGTTTGTTGTGAC;
1.2.2CRISPR/Cas9基因敲除載體的構(gòu)建
引物退火:1ul F-Oligo(100uM),1ul R-Oligo(100uM),8ul YSY oligo退火緩沖液,以上溶液混合于PCR管內(nèi),在PCR儀中以每分鐘1.5℃逐漸從95℃降至22℃。
連接:0.5ul退火產(chǎn)物,1ul YSY線性化三合一CRISPR/Cas9n質(zhì)粒,1ul T4連接酶,2ul 5*T4Buffer,5.5ul Milli Q。
轉(zhuǎn)化:室溫15min后用大腸桿菌DH5a感受態(tài)細(xì)胞(pfu≥108)進(jìn)行轉(zhuǎn)化。
轉(zhuǎn)化子驗(yàn)證:轉(zhuǎn)化涂板后挑取單克隆進(jìn)行10ul體系菌液PCR驗(yàn)證。
0.5ul菌液,0.5ul YSY驗(yàn)證正向引物,0.5ul R-Oligo,5ul Mastermix,3.5ulMilliQ;
PCR反應(yīng)條件:Seg1:95℃預(yù)變性2mim;Seg2:94℃變性30s;Seg3:56℃退火30s;Seg4:72℃延伸30s;Seg2to Seg4運(yùn)行35個(gè)循環(huán);Seg5:72℃再延伸10min;Seg6:4℃保存。
經(jīng)PCR初步鑒定為陽(yáng)性克隆送至南京金斯瑞生物科技有限公司進(jìn)行測(cè)序。
菌液37℃過(guò)夜培養(yǎng),無(wú)內(nèi)毒素質(zhì)粒大提試劑盒提取質(zhì)粒,并采用微量紫外分光光度計(jì)測(cè)定質(zhì)粒濃度。
2.結(jié)果
2.1sgRNA設(shè)計(jì)
在U6啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)下設(shè)計(jì)的sgRNA轉(zhuǎn)錄本RNA序列分別為:
TLR4-gRNA-Lg1:GACTCATATTCAGCACCTGAAGG;
TLR4-gRNA-Rg1:TCACAACAAACTCTTGTCATTGG;
2.2PCR驗(yàn)證陽(yáng)性克隆電泳圖片如圖2、3所示。
2.3送檢測(cè)序結(jié)果
將之前驗(yàn)證正確的陽(yáng)性克隆菌液送至金斯瑞生物技術(shù)有限公司測(cè)序,測(cè)序部分序列比對(duì)結(jié)果具體如下:
2.3.1pYSY-CMV-Cas9n-U6-TLR4-gRNA-L2-SV40-Neo;
通過(guò)對(duì)比,其同源性達(dá)到100%。
2.3.2pYSY-CMV-Cas9n-U6-TLR4-gRNA-R2-EF1a-Egfp;
其同源性達(dá)到100%。因此,通過(guò)以上序列比對(duì),可確定目標(biāo)質(zhì)粒構(gòu)建成功。
2.4山羊TLR4MC1R基因的敲除質(zhì)粒對(duì)提取及濃度測(cè)定:
pYSY-CMV-Cas9n-U6-TLR4-gRNA-L2-SV40-Neo質(zhì)粒:4ug濃度:130ng/ul;
pYSY-CMV-Cas9n-U6-TLR4-gRNA-R2-EF1a-eGFP質(zhì)粒:4ug濃度:209ng/ul。
下面結(jié)合原理分析對(duì)本發(fā)明進(jìn)一步說(shuō)明。
CRISPR/Cas9系統(tǒng),是新開(kāi)發(fā)的一種新型的基因打靶系統(tǒng),利用細(xì)菌或古生菌中存在的的CRISPR簇,在其前導(dǎo)區(qū)的調(diào)控下轉(zhuǎn)錄成precrRNA,并在tracrRNA和Cas9參與下加工成成熟的crRNA,cRNA和tracrRNA二者結(jié)合形成的復(fù)合物成為,sgRNA與Cas9核酸內(nèi)切酶結(jié)合,并引導(dǎo)其識(shí)別結(jié)合外源DNA特定序列,剪切DNA雙鏈,從而沉默外源基因的表達(dá)。
本發(fā)明采用CRISPR/Cas9系統(tǒng)構(gòu)建TLR4基因敲除載體,方法簡(jiǎn)單快捷,只需針對(duì)該基因敲除位點(diǎn)設(shè)計(jì)一個(gè)長(zhǎng)約20bp左右的sgRNA,然后連接通用的Cas9基因即可,而采用ZFNs或TALENs進(jìn)行基因敲除,對(duì)每個(gè)基因位點(diǎn)編輯都需要設(shè)計(jì)和組裝兩個(gè)核酸酶,構(gòu)建技術(shù)難度較大、構(gòu)建組裝時(shí)間較長(zhǎng)。因此,與傳統(tǒng)的ZFNs、TALENs等基因敲除技術(shù)比較而言,采用CRISPR/Cas9構(gòu)建基因敲除載體更為簡(jiǎn)單快捷,便于進(jìn)一步推廣和應(yīng)用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
另外,傳統(tǒng)基因敲除,主要是應(yīng)用基因重組原理通過(guò)插入突變和靶向技術(shù)使目的基因功能喪失,與ZFN和TALEN這兩種人工核酸酶相比,CRISPR/Cas9系統(tǒng)中的Cas9作為切口酶,具有單鏈切割活性,可以在特定位置制造單鏈切口,這樣基本不會(huì)引起非同源末端連接,從而高效地介導(dǎo)外源基因的定點(diǎn)敲入,或?qū)蚪M進(jìn)行點(diǎn)突變,大大降低了非同源末端連接所帶來(lái)的風(fēng)險(xiǎn)。
本發(fā)明構(gòu)建的載體,利用RNA導(dǎo)向的CRISPR-Cas9系統(tǒng)形成雙切口,在未影響靶向切割效率的前提下大大降低了脫靶效應(yīng),提高基因敲除效率。
以上所述僅為本發(fā)明的較佳實(shí)施例而已,并不用以限制本發(fā)明,凡在本發(fā)明的精神和原則之內(nèi)所作的任何修改、等同替換和改進(jìn)等,均應(yīng)包含在本發(fā)明的保護(hù)范圍之內(nèi)。
<110> 安徽省農(nóng)業(yè)科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所
<120> 一種山羊TLR4基因敲除載體的構(gòu)建方法
<160> 6
<210> 1
<211>23
<212> RNA
<213>人工序列
<400> 核苷酸序列
GACTCATATTCAGCACCTGAAGG
<210> 2
<211>23
<212> RNA
<213>人工序列
<400>核苷酸序列
TCACAACAAACTCTTGTCATTGG
<210> 3
<211>24
<212> RNA
<213>人工序列
<400>核苷酸序列
CACCGACTCATATTCAGCACCTGA
<210> 4
<211>24
<212> RNA
<213>人工序列
<400>核苷酸序列
AAACTCAGGTGCTGAATATGAGTC
<210> 5
<211>24
<212> RNA
<213>人工序列
<400>核苷酸序列
CACCGTCACAACAAACTCTTGTCAT
<210> 6
<211>24
<212> RNA
<213>人工序列
<400>核苷酸序列
AAACATGACAAGAGTTTGTTGTGAC